| 致谢 | 第1-10页 |
| 中文摘要 | 第10-11页 |
| 英文摘要 | 第11-13页 |
| 前言 | 第13-16页 |
| 第一部分 海洋细菌抗真菌活性物质的筛选 | 第16-56页 |
| 一. 材料与方法 | 第16-31页 |
| 1 菌种筛选 | 第16-22页 |
| ·取样地点 | 第16页 |
| ·样品处理 | 第16-18页 |
| ·第四批样品的处理 | 第16-17页 |
| ·第五批样品的处理 | 第17页 |
| ·第六批样品的处理 | 第17-18页 |
| ·培养基 | 第18-19页 |
| ·菌种分离 | 第19-20页 |
| ·第四批样品菌种分离 | 第19页 |
| ·第五批样品菌种分离 | 第19-20页 |
| ·第六批样品菌种分离 | 第20页 |
| ·菌种发酵 | 第20页 |
| ·菌种保藏 | 第20-21页 |
| ·培养物离心 | 第21页 |
| ·样品的抑菌活性测定 | 第21-22页 |
| ·供试病原菌株 | 第21页 |
| ·检测平皿的制作 | 第21页 |
| ·标准抗生素的制备方法 | 第21-22页 |
| ·样品的抑菌活性测定 | 第22页 |
| 2 菌株041381的来源，形态特征与生长特征 | 第22-23页 |
| ·菌种来源 | 第22页 |
| ·形态特征 | 第22页 |
| ·生长特征 | 第22-23页 |
| ·生长曲线 | 第22页 |
| ·耐盐度实验 | 第22-23页 |
| 3 菌株041381发酵条件究 | 第23-24页 |
| ·种子液的制备 | 第23页 |
| ·最适发酵培养基的选择 | 第23页 |
| ·碳源实验 | 第23页 |
| ·氮源实验 | 第23页 |
| ·氮源的量改变 | 第23-24页 |
| ·通氧量和活性的关系 | 第24页 |
| ·不同发酵时间对菌株041381产抗真菌物质的影响 | 第24页 |
| ·不同发酵温度对菌株041381产抗真菌物质的影响 | 第24页 |
| ·不同NaCl浓度对菌株041381产抗真菌活性物质的影响 | 第24页 |
| 4 菌株041381活性物质的理化性质 | 第24-26页 |
| ·菌株041381发酵上清液的理化分析 | 第24-25页 |
| ·极性 | 第24-25页 |
| ·沉淀 | 第25页 |
| ·盐析 | 第25页 |
| ·菌株041381所产活性物质粗品的理化分析 | 第25-26页 |
| ·粗品的制备 | 第25页 |
| ·粗品的热稳定性 | 第25页 |
| ·粗品的酸碱稳定性 | 第25页 |
| ·粗品的溶解性 | 第25-26页 |
| 5 活性物质的抑菌活性和细胞毒性 | 第26页 |
| ·抗细菌活性 | 第26页 |
| ·抗真菌活性 | 第26页 |
| ·最小抑菌浓度(MIC) | 第26页 |
| ·细胞毒性 | 第26页 |
| 6 菌株041381所产活性物质的分离纯化 | 第26-28页 |
| ·Sephadex G-75层析柱分离 | 第26-27页 |
| ·对样品、对照，、纯品进行SDS-PAGE电泳 | 第27-28页 |
| ·样品、对照，、纯品的制备 | 第27页 |
| ·SDS-PAGE电泳 | 第27-28页 |
| 7 仪器 | 第28-29页 |
| 8 参考文献 | 第29-31页 |
| 二 结果与讨论 | 第31-56页 |
| 1 具有抗真菌活性菌种的筛选 | 第31-38页 |
| ·第四批样品的采集和筛选 | 第31-33页 |
| ·第四批样品的采集 | 第31页 |
| ·第四批样品的菌种分离 | 第31-32页 |
| ·第四批样品的筛选 | 第32-33页 |
| ·第五批样品的采集和筛选 | 第33-35页 |
| ·第五批样品的采集 | 第33页 |
| ·第五批菌种的分离 | 第33-34页 |
| ·第五批活性菌株的筛选 | 第34-35页 |
| ·第六批样品的采集和筛选 | 第35-37页 |
| ·第六批样品的采集 | 第35页 |
| ·第六批菌种分离 | 第35-36页 |
| ·第六批菌种筛选 | 第36-37页 |
| ·复筛结果 | 第37页 |
| ·三批菌种分离筛选小结 | 第37-38页 |
| 2 菌株041381的形态特征与生长特征 | 第38-40页 |
| ·形态特征 | 第38-39页 |
| ·生长特征 | 第39-40页 |
| ·生长曲线 | 第39页 |
| ·耐盐度实验结果 | 第39-40页 |
| 3 菌株041381发酵条件的优化 | 第40-47页 |
| ·最适培养基，最适培养方式的选择 | 第40-41页 |
| ·碳源的实验 | 第41页 |
| ·氮源的实验 | 第41-42页 |
| ·氮源的量改变 | 第42-43页 |
| ·通氧量与活性的关系 | 第43-44页 |
| ·培养时间对产抗菌活性物质的影响 | 第44页 |
| ·发酵温度对产抗菌活性物质的影响 | 第44-45页 |
| ·不同NaCl浓度对产抗菌活性物质的影响 | 第45-47页 |
| 4 菌株041381所产活性物质的理化性质 | 第47-50页 |
| ·菌株041381发酵上清液的理化性质 | 第47-49页 |
| ·极性 | 第47页 |
| ·沉淀 | 第47-48页 |
| ·盐析 | 第48-49页 |
| ·菌株041381所产活性物质粗品的理化性质 | 第49-50页 |
| ·热稳定性 | 第49页 |
| ·酸碱稳定性 | 第49-50页 |
| ·粗品的溶解性 | 第50页 |
| 5 活性物质的抑菌活性和细胞毒性 | 第50-52页 |
| ·抗细菌活性 | 第50-51页 |
| ·抗真菌活性 | 第51页 |
| ·最小抑菌浓度(MIC) | 第51页 |
| ·细胞毒性 | 第51-52页 |
| 6 活性物质的分离纯化 | 第52-53页 |
| ·Sephadex G-75层析柱分离 | 第52页 |
| ·SDS-PAGE电泳 | 第52-53页 |
| 7 菌株041381的小结 | 第53-54页 |
| 8 参考文献 | 第54-56页 |
| 第二部分 美蓝-酶标仪法的建立 | 第56-74页 |
| 一 材料与方法 | 第57-62页 |
| 1 材料 | 第57页 |
| ·标准抗生素 | 第57页 |
| ·标准抗生素 | 第57页 |
| ·染料 | 第57页 |
| ·培养基 | 第57页 |
| 2 方法 | 第57-61页 |
| ·可行性实验 | 第57-58页 |
| ·美蓝法筛选抗酵母类真菌活性物质条件的确定 | 第58-60页 |
| ·美蓝最大吸收波长的确定 | 第58页 |
| ·白色念珠菌生长曲线的测定 | 第58页 |
| ·本方法三个重要参数的确定 | 第58-60页 |
| ·技术路线 | 第58页 |
| ·靶菌液的稀释，抗生素的稀释 | 第58页 |
| ·种板 | 第58-59页 |
| ·抗生素与靶菌液作用 | 第59页 |
| ·酶标仪测定空白板吸光值 | 第59页 |
| ·加入美蓝 | 第59页 |
| ·保温 | 第59页 |
| ·酶标仪测定吸光值 | 第59页 |
| ·处理数据，SAS分析，确定三个重要参数 | 第59-60页 |
| ·用本方法筛选具有抗酵母类真菌活性物质的判定界限 | 第60页 |
| ·本方法的影响因素 | 第60-61页 |
| ·接种靶菌液浓度的影响 | 第60-61页 |
| ·保温时间的影响 | 第61页 |
| ·抗生素与靶菌液作用时间的影响 | 第61页 |
| ·进板方式的影响 | 第61页 |
| ·抗生素与靶菌液作用方式的影响 | 第61页 |
| 3 本研究使用的仪器设备 | 第61-62页 |
| 二 结果 | 第62-68页 |
| 1 可行性实验 | 第62-63页 |
| 2 美蓝的最大吸收波长的确定 | 第63-64页 |
| 3 白色念珠菌的生长曲线 | 第64页 |
| 4 本方法三个重要参数的确定 | 第64-65页 |
| 5 用本方法筛选具有抗酵母类真菌活性物质的判定界限 | 第65-66页 |
| 6 本方法的最终建立 | 第66页 |
| 7 接种菌液浓度的影响 | 第66页 |
| 8 保温时间的影响 | 第66-67页 |
| 9 抗生素与靶菌液作用时间的影响 | 第67-68页 |
| 10 进板方式的影响 | 第68页 |
| 11 培养方式的影响 | 第68页 |
| 三 讨论 | 第68-72页 |
| 1 本方法的适用范围 | 第68页 |
| 2 本方法的应用实例 | 第68-71页 |
| 3 本方法与琼脂挖块法，MTT法的比较 | 第71-72页 |
| 四 参考文献 | 第72-74页 |
| 结论 | 第74-75页 |
| 文献综述 | 第75-93页 |
| 一 抗真菌药物的现状 | 第75-82页 |
| 二 海洋微生物抗真菌活性物质的筛选 | 第82-89页 |
| 三 参考文献 | 第89-93页 |
