| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-11页 |
| 1 引言 | 第11-45页 |
| ·毛囊结构研究的进展 | 第11-25页 |
| ·毛囊的基本结构 | 第11页 |
| ·毛囊的组织发生 | 第11-13页 |
| ·毛与毛囊的周期性变化 | 第13-14页 |
| ·影响毛囊生长相关因子的研究进展 | 第14-18页 |
| ·毛囊干细胞的研究进展 | 第18-20页 |
| ·毛囊体外培养的研究现状 | 第20-22页 |
| ·毛囊的分离方法 | 第22页 |
| ·毛囊的培养 | 第22-24页 |
| ·毛囊体外培养主要的研究模型 | 第24-25页 |
| ·毛囊体外培养研究的价值及前景 | 第25-27页 |
| ·离体毛囊体外培养的应用 | 第26页 |
| ·离体毛囊体外培养在雄激素源性脱发治疗中的应用 | 第26页 |
| ·离体毛囊体外培养在痤疮治疗中的应用 | 第26-27页 |
| ·毛囊体外培养的研究要解决的问题 | 第27-28页 |
| ·毛囊细胞凋亡的研究进展 | 第28-31页 |
| ·细胞凋亡的研究 | 第28页 |
| ·细胞凋亡的基因调控 | 第28-31页 |
| ·毛囊细胞凋亡的研究现状及研究意义 | 第31-34页 |
| ·PCR 技术进展 | 第34-38页 |
| ·定量PCR 方法研究进展 | 第35-36页 |
| ·竞争性RT-PCR 方法原理 | 第36-37页 |
| ·基因组文库 | 第37页 |
| ·cDNA 基因文库 | 第37-38页 |
| ·PCR 法分离目的基因 | 第38页 |
| ·定量PCR | 第38-42页 |
| ·常用的实时定量PCR 方法 | 第39-41页 |
| ·影响QRTPCR 的因素 | 第41-42页 |
| ·Ct 值 | 第42页 |
| ·RT-PCR 简介 | 第42-43页 |
| ·RT-PCR 引物的选择 | 第43页 |
| ·RT-PCR 影响因素 | 第43页 |
| ·我们开展绵羊皮肤毛囊培养的目的与意义 | 第43-45页 |
| 2 实验一不同培养条件对体外培养绵羊毛囊生长的影响 | 第45-67页 |
| ·材料与方法 | 第45页 |
| ·材料 | 第45页 |
| ·实验药品与试剂 | 第45页 |
| ·仪器设备 | 第45页 |
| ·实验方法 | 第45-48页 |
| ·溶液的配置 | 第46页 |
| ·绵羊皮肤毛囊的分离 | 第46-47页 |
| ·Sacpic 染色 | 第47-48页 |
| ·绵羊皮肤毛囊HE 染色 | 第48页 |
| ·实验结果 | 第48-64页 |
| ·培养毛囊的形态观察 | 第48-61页 |
| ·培养毛囊的组织结构观察 | 第61-64页 |
| ·讨论 | 第64-66页 |
| ·能挑选出完好无损健康的生长期毛囊是体外培养毛囊研究的首要问题 | 第64页 |
| ·绵羊皮肤毛囊培养液的选择是体外培养毛囊研究的核心问题 | 第64页 |
| ·绵羊皮肤毛囊培养液相关因子的加入 | 第64-65页 |
| ·绵羊皮肤毛囊培养条件的选择 | 第65页 |
| ·毛囊的体外生长特点的分析 | 第65-66页 |
| ·结论 | 第66-67页 |
| 3 实验二17-β-雌二醇对体外培养毛囊生长影响的形态学上的观察 | 第67-83页 |
| ·材料与方法 | 第67-68页 |
| ·材料 | 第67页 |
| ·仪器与主要试剂 | 第67-68页 |
| ·实验方法 | 第68-69页 |
| ·溶液的配置 | 第68页 |
| ·绵羊皮肤毛囊的分离 | 第68-69页 |
| ·实验结果 | 第69-81页 |
| ·培养毛囊的形态观察 | 第69-79页 |
| ·不同浓度17-β-雌二醇组与对照组之间的对比观察结果 | 第79-81页 |
| ·讨论 | 第81-82页 |
| ·生理状态下雌激素和实验中 17-β-雌二醇的浓度确定 | 第81页 |
| ·雌激素对毛囊和毛发生长的影响 | 第81页 |
| ·雄激素对毛囊和毛发生长的影响 | 第81-82页 |
| ·结论 | 第82-83页 |
| 4 实验三 蒙古绵羊皮肤毛囊 Bcl-2、Bax 基因表达 | 第83-91页 |
| ·材料与方法 | 第83-86页 |
| ·实验动物及组织 | 第83页 |
| ·主要仪器和试剂 | 第83页 |
| ·PCR 引物的设计及合成 | 第83-84页 |
| ·蒙古绵羊皮肤毛囊群总 RNA 的提取及检测 | 第84-86页 |
| ·RT-PCR 产物 cDNA 的序列测定 | 第86页 |
| ·序列分析 | 第86页 |
| ·结果 | 第86-89页 |
| ·蒙古绵羊皮肤毛囊总 RNA 的检测结果 | 第86页 |
| ·蒙古绵羊皮肤毛囊 RT-PCR 扩增结果 | 第86-88页 |
| ·蒙古绵羊皮肤毛囊 PCR 产物的序列分析结果 | 第88-89页 |
| ·讨论 | 第89-90页 |
| ·Bcl-2、Bax 的表达 | 第89-90页 |
| ·蒙古绵羊皮肤毛囊 Bcl-2、Bax 基因表达情况 | 第90页 |
| ·提取样品总RNA 时注意的问题 | 第90页 |
| ·结论 | 第90-91页 |
| 5 实验四 实时定量 PCR 检测 17-β-雌二醇对培养毛囊 Bcl-2、Bax 表达的影响 | 第91-113页 |
| ·材料和方法 | 第92-93页 |
| ·实验材料处理同本论文4.1.1 | 第92页 |
| ·实验材料 | 第92-93页 |
| ·仪器及试剂 | 第93页 |
| ·PCR 引物的设计及合成 | 第93页 |
| ·实验设计 | 第93-98页 |
| ·添加雌激素 17-β-雌二醇 | 第93页 |
| ·毛囊总RNA 的提取 | 第93-94页 |
| ·荧光定量 RT-PCR 检测培养的毛囊 Bcl-2、Bax 表达的定量方法 | 第94-98页 |
| ·结果 | 第98-108页 |
| ·荧光定量 RT-PCR 检测培养的毛囊 Bcl-2、Bax 表达定量方法的确定 | 第98-103页 |
| ·添加 17-β-雌二醇对培养毛囊 Bcl-2 和 Bax 表达的影响 | 第103-108页 |
| ·讨论 | 第108-112页 |
| ·毛囊群的培养 | 第108-109页 |
| ·Bcl-2 的表达 | 第109页 |
| ·Bax 的表达 | 第109-110页 |
| ·Bcl-2、Bax 基因在毛囊中表达的意义 | 第110-111页 |
| ·PCR 反应体系的探讨 | 第111-112页 |
| ·结论 | 第112-113页 |
| 6 全文总结 | 第113-114页 |
| 致谢 | 第114-115页 |
| 参考文献 | 第115-133页 |
| 附录 | 第133-136页 |
| 作者简介 | 第136页 |
