摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
致谢 | 第7-13页 |
第一章 绪论 | 第13-21页 |
·糖尿病 | 第13-15页 |
·糖尿病的概念及流行病学 | 第13页 |
·糖尿病的发病机制及诊断 | 第13页 |
·β细胞凋亡与Ⅱ型糖尿病 | 第13-14页 |
·糖尿病治疗药物 | 第14-15页 |
·蜂胶 | 第15-20页 |
·蜂胶的定义及理化性质 | 第15页 |
·蜂胶与蜂胶黄酮 | 第15页 |
·蜂胶与糖尿病 | 第15页 |
·蜂胶的安全性 | 第15-16页 |
·黄酮的不稳定性 | 第16页 |
·黄酮类物质吸收的不完全性 | 第16页 |
·脂质体技术 | 第16-20页 |
·研究背景与试验方案 | 第20-21页 |
第二章 蜂胶脂质体的制备及工艺优化研究 | 第21-32页 |
·试验材料和仪器 | 第21页 |
·主要试验材料 | 第21页 |
·仪器和设备 | 第21页 |
·试验方法 | 第21-24页 |
·包封率和K_E值的测定 | 第21-22页 |
·蜂胶脂质体悬浮液制备方法 | 第22-23页 |
·脂质体制备工艺参数的选择 | 第23页 |
·脂质体制备处方的筛选 | 第23页 |
·脂质体制备过程中影响较大因素的单因素试验 | 第23-24页 |
·正交试验 | 第24页 |
·最佳工艺条件验证 | 第24页 |
·结果与讨论 | 第24-31页 |
·脂质体制备方法的确定 | 第24-25页 |
·脂质体制备工艺参数 | 第25页 |
·脂质体制备处方 | 第25-26页 |
·对脂质体影响较大因素的单因素的实验结果 | 第26-29页 |
·正交试验结果与分析 | 第29-30页 |
·验证试验 | 第30-31页 |
·最佳工艺条件下脂质体的包封率和K_E值 | 第31页 |
·小结 | 第31-32页 |
第三章 蜂胶脂质体的理化性质及其冻干粉的研究 | 第32-39页 |
·试验材料和仪器 | 第32页 |
·主要试验材料 | 第32页 |
·仪器和设备 | 第32页 |
·试验方法 | 第32-34页 |
·蜂胶脂质体悬浮液理化性质研究 | 第32页 |
·蜂胶脂质体初步储藏稳定性考察 | 第32-33页 |
·蜂胶脂质体冻干前后理化性质的变化 | 第33页 |
·二氯甲烷残留量的检测 | 第33页 |
·红外光谱 | 第33-34页 |
·结果与分析 | 第34-38页 |
·蜂胶脂质体悬浮液理化性质 | 第34页 |
·蜂胶脂质体的初步储藏稳定性 | 第34页 |
·蜂胶脂质体冻干前后的理化性质 | 第34-36页 |
·二氯甲烷残留量的检测 | 第36-37页 |
·红外光谱 | 第37-38页 |
·小结 | 第38-39页 |
第四章 蜂胶脂质体对小鼠血糖的影响 | 第39-50页 |
·材料和仪器 | 第39页 |
·主要试验材料 | 第39页 |
·主要仪器 | 第39页 |
·试验方法 | 第39-43页 |
·蜂胶脂质体对正常小鼠的影响 | 第39-41页 |
·蜂胶脂质体对高血糖小鼠的影响 | 第41-43页 |
·试验结果与分析 | 第43-49页 |
·蜂胶脂质体对正常小鼠的影响 | 第43-45页 |
·蜂胶脂质体对高血糖小鼠的影响 | 第45-49页 |
·小结 | 第49-50页 |
第五章 蜂胶脂质体对小鼠胰腺bax和bcl-2 mRNA表达的影响 | 第50-56页 |
·试验材料和仪器 | 第50-51页 |
·试验材料 | 第50页 |
·试剂配制 | 第50-51页 |
·主要仪器 | 第51页 |
·试验方法 | 第51-53页 |
·引物设计 | 第51页 |
·总RNA抽提与分析 | 第51-52页 |
·RNA逆转录反应 | 第52页 |
·目的基因PCR扩增及定量 | 第52-53页 |
·结果与讨论 | 第53-55页 |
·RNA抽提 | 第53页 |
·小鼠胰腺组织Bax mRNA的表达 | 第53-54页 |
·小鼠胰腺组织Bcl-2 mRNA的表达 | 第54页 |
·Bcl-2/Bax mRNA的基因表达 | 第54-55页 |
·本章小结 | 第55-56页 |
第六章 结论与展望 | 第56-57页 |
·结论 | 第56页 |
·展望 | 第56-57页 |
参考文献 | 第57-60页 |
攻读硕士学位期间发表的论文 | 第60页 |