| 摘要 | 第1-10页 |
| ABSTRACT | 第10-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-27页 |
| ·壳聚糖脂质体复合微粒载体的制备 | 第13-19页 |
| ·脂质体的制备 | 第14-19页 |
| ·薄膜分散法 | 第14-15页 |
| ·逆相蒸发法 | 第15-16页 |
| ·注入法 | 第16-17页 |
| ·熔融法 | 第17-18页 |
| ·复乳法 | 第18页 |
| ·硫酸铵梯度法 | 第18-19页 |
| ·冷冻干燥法 | 第19页 |
| ·壳聚糖脂质体复合微粒载体的制备 | 第19-21页 |
| ·脂质体滴入壳聚糖法 | 第19-20页 |
| ·壳聚糖滴入脂质体法 | 第20页 |
| ·孵育法 | 第20页 |
| ·冷冻干燥法 | 第20-21页 |
| ·复合微粒的理化性质 | 第21-22页 |
| ·壳聚糖脂质体结合率的测定 | 第21页 |
| ·复合微粒外观形态考察 | 第21-22页 |
| ·复合微粒粒径和zeta电位测定 | 第22页 |
| ·壳聚糖脂质体复合微粒载体在药物传递系统中的应用 | 第22-26页 |
| ·保护作用 | 第22-23页 |
| ·促渗作用 | 第23页 |
| ·提高靶向性 | 第23-24页 |
| ·制备pH敏纳米脂质体 | 第24-25页 |
| ·增加药物的缓释性 | 第25页 |
| ·降低阳离子脂质体细胞毒性 | 第25-26页 |
| ·小结 | 第26-27页 |
| 第二章 壳聚糖脂质体复合微粒的构建及性质 | 第27-42页 |
| ·引言 | 第27-28页 |
| ·材料与仪器 | 第28-29页 |
| ·材料 | 第28-29页 |
| ·仪器 | 第29页 |
| ·实验方法 | 第29-32页 |
| ·壳聚糖脂质体复合微粒的制备 | 第29-30页 |
| ·逆相蒸发法制空白脂质体 | 第29-30页 |
| ·壳聚糖包脂质体复合微粒(CS-LP)的制备 | 第30页 |
| ·脂质体包壳聚糖复合微粒(LP-CS)的制备 | 第30页 |
| ·脂质体壳聚糖复合微粒结合率的测定 | 第30-31页 |
| ·壳聚糖标准曲线绘制 | 第30-31页 |
| ·溶液稳定性与精密度 | 第31页 |
| ·超速离心法测结合率 | 第31页 |
| ·复合微粒形态考察 | 第31页 |
| ·粒径和zeta电位的测定 | 第31-32页 |
| ·红外图谱的观察 | 第32页 |
| ·细胞毒性实验 | 第32页 |
| ·结果与分析 | 第32-41页 |
| ·包封率测定 | 第32-35页 |
| ·CS标准曲线绘制 | 第32-33页 |
| ·溶液稳定性和精密度 | 第33页 |
| ·复合微粒结合率测定 | 第33-35页 |
| ·复合微粒形态考察 | 第35-36页 |
| ·粒径和zeta电位的测定 | 第36-39页 |
| ·红外图谱考察 | 第39-40页 |
| ·细胞毒性实验 | 第40-41页 |
| ·小结 | 第41-42页 |
| 第三章 壳聚糖脂质体复合微粒作为荧光红 GG载体的研究 | 第42-53页 |
| ·引言 | 第42页 |
| ·材料与仪器 | 第42-43页 |
| ·材料 | 第42-43页 |
| ·仪器 | 第43页 |
| ·实验方法 | 第43-46页 |
| ·荧光红 GG含量测定方法 | 第43-44页 |
| ·荧光红 GG标准曲线绘制 | 第43页 |
| ·精密度 | 第43-44页 |
| ·溶液稳定性 | 第44页 |
| ·回收率试验 | 第44页 |
| ·荧光红 GG脂质体(LP-GG)的制备 | 第44页 |
| ·包封率测定 | 第44-45页 |
| ·荧光红 GG总浓度的测定 | 第44页 |
| ·包封率的测定 | 第44-45页 |
| ·包封率测定的验证 | 第45页 |
| ·壳聚糖包荧光红 GG脂质体(CS-LP-GG)的制备 | 第45页 |
| ·荧光红 GG细胞摄取实验 | 第45-46页 |
| ·荧光红 GG浓度对细胞摄取量的影响 | 第45页 |
| ·荧光红 GG细胞摄取动力学 | 第45-46页 |
| ·结果与分析 | 第46-52页 |
| ·荧光红 GG的测定 | 第46-48页 |
| ·荧光红 GG的标准曲线方程 | 第46-47页 |
| ·精密度 | 第47页 |
| ·溶液稳定性 | 第47-48页 |
| ·回收率试验 | 第48页 |
| ·荧光红 GG脂质体的形态观察 | 第48-49页 |
| ·包封率测定 | 第49-50页 |
| ·荧光红总量的测定 | 第49页 |
| ·包封率的测定 | 第49页 |
| ·包封率测定方法的验证 | 第49-50页 |
| ·荧光红 GG细胞摄取实验 | 第50-52页 |
| ·荧光红 GG浓度对细胞摄取量的影响 | 第50-51页 |
| ·荧光红 GG细胞摄取动力学 | 第51-52页 |
| ·小结 | 第52-53页 |
| 第四章 壳聚糖脂质体复合微粒作为 ODN载体的研究 | 第53-62页 |
| ·引言 | 第53页 |
| ·材料与仪器 | 第53-55页 |
| ·材料 | 第53-54页 |
| ·仪器 | 第54-55页 |
| ·实验方法 | 第55-56页 |
| ·fODN复合微粒的制备 | 第55页 |
| ·寡核苷酸(ODN)凝胶阻滞实验 | 第55页 |
| ·寡核苷酸(fODN)细胞摄取实验 | 第55-56页 |
| ·寡核苷酸(fODN)细胞摄取动力学方程 | 第56页 |
| ·寡核苷酸(fODN)入胞机制考察 | 第56页 |
| ·结果与分析 | 第56-60页 |
| ·寡核苷酸(ODN)凝胶阻滞实验 | 第56-57页 |
| ·寡核苷酸(fODN)细胞摄取实验 | 第57-59页 |
| ·寡核苷酸(fODN)细胞摄取动力学方程 | 第59页 |
| ·寡核苷酸(fODN)入胞机制考察 | 第59-60页 |
| ·小结 | 第60-62页 |
| 参考文献 | 第62-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 硕士期间论文发表情况 | 第70页 |
