| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-31页 |
| ·概述 | 第13页 |
| ·硫甙化学 | 第13-18页 |
| ·硫甙的结构与类型 | 第13-14页 |
| ·硫甙的化学合成 | 第14-15页 |
| ·硫甙的生物合成及调控 | 第15-16页 |
| ·硫甙的降解及调控 | 第16-18页 |
| ·硫代葡萄糖苷--黑芥子酶系统 | 第16-17页 |
| ·硫甙的降解机理 | 第17-18页 |
| ·降解物的调控 | 第18页 |
| ·硫甙降解产物及生物活性 | 第18-20页 |
| ·硫甙降解产物 | 第18-19页 |
| ·异硫氰酸酯 | 第18-19页 |
| ·吲哚-3-甲醇 | 第19页 |
| ·生物活性作用 | 第19-20页 |
| ·风味作用 | 第19页 |
| ·植物防御作用 | 第19-20页 |
| ·防癌抗癌作用 | 第20页 |
| ·致甲状腺肿及其它抗营养作用 | 第20页 |
| ·其它生物活性 | 第20页 |
| ·硫甙的定性及定量检测 | 第20-22页 |
| ·显色法 | 第21页 |
| ·高效液相色谱法(HPLC) | 第21-22页 |
| ·莱菔硫烷稳定性研究 | 第22-23页 |
| ·硫甙碳碳双键的催化加氢反应 | 第23页 |
| ·生物催化有机合成的概况 | 第23-27页 |
| ·微生物转化反应的特点 | 第24-25页 |
| ·微生物转化反应的作用 | 第25页 |
| ·微生物转化的应用 | 第25-26页 |
| ·微生物转化的影响因素 | 第26-27页 |
| ·微生物转化的时间和温度 | 第26页 |
| ·底物的添加方式 | 第26-27页 |
| ·课题的意义和主要的研究内容 | 第27-31页 |
| ·课题的研究意义 | 第27-28页 |
| ·本课题研究思路 | 第28-29页 |
| ·本课题研究内容 | 第29-31页 |
| 第二章 菌种的筛选 | 第31-43页 |
| ·TLC检测方法的确定 | 第31-33页 |
| ·实验试剂和仪器 | 第32页 |
| ·实验方法 | 第32页 |
| ·硅胶薄层板的活化 | 第32页 |
| ·点样分析 | 第32页 |
| ·薄层色谱展开剂选择 | 第32页 |
| ·结果与讨论 | 第32-33页 |
| ·GLUCORAPHANIN生物降解菌种的筛选 | 第33-40页 |
| ·实验材料、试剂及仪器 | 第33-34页 |
| ·实验试剂及仪器 | 第33页 |
| ·培养基 | 第33-34页 |
| ·微生物菌株 | 第34页 |
| ·底物 | 第34页 |
| ·实验方法 | 第34-37页 |
| ·降解底物的制备 | 第34-35页 |
| ·GRA对照品的制备 | 第35-36页 |
| ·菌种筛选实验 | 第36-37页 |
| ·样品处理 | 第37页 |
| ·HPLC检测微生物降解结果 | 第37页 |
| ·实验结果与分析 | 第37-40页 |
| ·GLUCORAPHENIN生物转化菌种的筛选 | 第40-42页 |
| ·实验材料、试剂及仪器 | 第40-41页 |
| ·实验试剂及仪器 | 第40页 |
| ·培养基 | 第40页 |
| ·微生物菌株 | 第40页 |
| ·底物 | 第40-41页 |
| ·实验方法 | 第41页 |
| ·底物GRE的制备 | 第41页 |
| ·GRE对品照的制备 | 第41页 |
| ·菌种筛选实验 | 第41页 |
| ·样品处理 | 第41页 |
| ·HPLC检测微生物降解结果 | 第41页 |
| ·实验结果与分析 | 第41-42页 |
| ·本章小结 | 第42-43页 |
| 第三章 GLUCORAPHANIN的生物降解的研究 | 第43-55页 |
| ·检测方法的确定 | 第43-47页 |
| ·实验试剂和仪器 | 第43页 |
| ·实验方法 | 第43-44页 |
| ·波长的确定 | 第43页 |
| ·标准液的配制 | 第43-44页 |
| ·检测条件的优化 | 第44页 |
| ·检测条件的应用 | 第44页 |
| ·实验结果与分析 | 第44-47页 |
| ·检测波长的确定 | 第44-45页 |
| ·检测条件的优化 | 第45页 |
| ·检测条件的应用 | 第45-47页 |
| ·连续培养法硫代葡萄糖苷GRA降解动态研究 | 第47-51页 |
| ·材料与方法 | 第47页 |
| ·实验药品、试剂及仪器 | 第47页 |
| ·培养基 | 第47页 |
| ·微生物菌株 | 第47页 |
| ·实验方法 | 第47-48页 |
| ·反应时间对反应的影响 | 第47-48页 |
| ·培养基葡萄糖浓度对反应的影响 | 第48页 |
| ·底物加药量对反应的影响 | 第48页 |
| ·抑制剂对反应的影响 | 第48页 |
| ·实验结果与分析 | 第48-51页 |
| ·反应时间对降解率的影响 | 第48-49页 |
| ·培养基中的葡萄糖浓度对降解率的影响 | 第49-50页 |
| ·加药量对转化产率的影响 | 第50页 |
| ·抑制剂对反应的影响 | 第50-51页 |
| ·静态细胞法对硫代葡萄糖苷GRA降解的研究 | 第51-53页 |
| ·材料与方法 | 第52页 |
| ·实验药品、试剂及仪器 | 第52页 |
| ·培养基 | 第52页 |
| ·微生物菌株 | 第52页 |
| ·实验方法 | 第52-53页 |
| ·摇床培养 | 第52页 |
| ·静息细胞培养 | 第52-53页 |
| ·实验结果与分析 | 第53页 |
| ·本章小结 | 第53-55页 |
| 第四章 GLUCORAPHENIN生物转化的研究 | 第55-61页 |
| ·材料与方法 | 第55页 |
| ·实验药品、试剂及仪器 | 第55页 |
| ·培养基 | 第55页 |
| ·微生物菌株 | 第55页 |
| ·实验方法 | 第55-60页 |
| ·硫代葡萄糖苷GRE转化动态研究 | 第56-57页 |
| ·转化时间对转化反应的影响 | 第56页 |
| ·培养基pH值对转化反应的影响 | 第56页 |
| ·底物加药量对转化反应的影响 | 第56-57页 |
| ·实验结果与讨论 | 第57-58页 |
| ·GRE转化产物的鉴定 | 第58-60页 |
| ·本章小结 | 第60-61页 |
| 第五章 莱菔硫烷稳定性的研究 | 第61-73页 |
| ·材料与仪器 | 第61-62页 |
| ·实验材料 | 第61页 |
| ·实验仪器 | 第61-62页 |
| ·实验方法 | 第62页 |
| ·莱菔硫烷含量测定方法 | 第62页 |
| ·热稳定性实验 | 第62页 |
| ·光稳定性实验 | 第62页 |
| ·温度、PH和光照对莱菔硫烷水溶液稳定性的影响 | 第62-70页 |
| ·热稳定性实验 | 第62-68页 |
| ·对莱菔硫烷稳定性的影响 | 第62-64页 |
| ·热降解产物的测定 | 第64-65页 |
| ·莱菔硫烷油状原液有效期 | 第65-66页 |
| ·莱菔硫烷放置留样结果 | 第66-68页 |
| ·光照对莱菔硫烷的稳定性影响 | 第68-69页 |
| ·空气中的氧气对莱菔硫烷的稳定性影响 | 第69-70页 |
| ·包装材料对莱菔硫烷的稳定性影响 | 第70页 |
| ·本章小结 | 第70-73页 |
| 第六章 总结和建议 | 第73-75页 |
| ·总结 | 第73-74页 |
| ·建议 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-81页 |
| 致谢 | 第81-83页 |
| 研究成果及发表的学术论文 | 第83-85页 |
| 作者和导师简介 | 第85-86页 |
| 北京化工大学硕士研究生学位论文答辩委员会决议书 | 第86-87页 |