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HNF4α抑制YAP-TEAD在大小鼠肝细胞癌模型中的作用研究

摘要第10-11页
Abstract第11页
第一章 前言第12-25页
    1.1 HNFs肝细胞核因子家族第12-17页
        1.1.1 HNFs肝细胞核因子家族简介第12页
        1.1.2 HNFs分类及其结构第12-13页
        1.1.3 HNF家族在肝脏发育过程中的作用第13-14页
        1.1.4 HNF4α(肝细胞核因子4α)第14-17页
    1.2 Hippo信号通路第17-23页
        1.2.1 Hippo信号通路的发现及主要结构第17-19页
        1.2.2 Hippo信号通路中YAP/TAZ的调控及功能第19-20页
        1.2.3 Hippo信号通路各组分与癌症第20-22页
        1.2.4 Hippo信号通路组分与肝细胞癌第22-23页
    1.3 肝细胞癌第23-25页
第二章 材料与方法第25-45页
    2.1 常用药品与试剂第25页
    2.2 分子克隆相关实验方法第25-29页
        2.2.1 大肠杆菌感受态细胞的制备第25-26页
        2.2.2 质粒转化第26页
        2.2.3 质粒DNA小提中量第26-27页
        2.2.4 质粒构建第27-29页
    2.3 细胞相关实验方法第29-33页
        2.3.1 细胞系第29页
        2.3.2 细胞培养第29-30页
        2.3.3 细胞复苏第30页
        2.3.4 细胞传代第30页
        2.3.5 细胞冻存第30页
        2.3.6 PEI转染法(10cm盘为例)第30-31页
        2.3.7 TurboFect转染法(以六孔板为例)第31页
        2.3.8 慢病毒的包装与感染第31-32页
        2.3.9 Lipofectamine 3000转染试剂转染(以六孔板为例)第32页
        2.3.10 腺病毒的包装与纯化第32-33页
    2.4 细胞蛋白及RNA相关实验方法第33-41页
        2.4.1 细胞蛋白相关实验第33-36页
        2.4.2 RNA相关实验第36-39页
        2.4.3 luciferase实验(以24孔板为例)第39-40页
        2.4.4 Ch-IP实验第40-41页
    2.5 动物模型相关实验第41-44页
        2.5.1 DEN诱导大鼠肝癌模型的构建第41页
        2.5.2 尾静脉注射腺病毒第41-42页
        2.5.3 大(小)鼠肝脏组织样品蛋白提取第42页
        2.5.4 大(小)鼠肝脏组织样品总RNA提取第42页
        2.5.5 大(小)鼠肝脏组织样品免疫组化实验第42-44页
    2.6 全文统计学分析方法第44-45页
第三章 实验结果第45-57页
    3.1 HNF4α与YAP1的表达在多种肝癌细胞系中呈现明显的负相关第45-46页
    3.2 HNF4α与YAP1竞争性结合TEAD从而抑制YAP1-TEAD的下游靶基因表达水平第46-51页
        3.2.1 TEAD1和TEAD4在肝细胞癌中起主要作用第46-47页
        3.2.2 过表达的HNF4α抑制YAP1-TEAD1的结合第47-48页
        3.2.3 敲减HNF4α增强了YAP1-TEAD4的结合第48-49页
        3.2.4 敲减HNF4α促进了CTGF promoter调控的luciferase活性第49-50页
        3.2.5 HNF4α通过TEADs结合到YAP-TEAD下游靶基因的promoter上第50-51页
    3.3 DEN诱导大鼠肝癌模型中过表达HNF4α能有效抑制YAP1-TEAD下游靶基因的表达量第51-53页
    3.4 HNF4α能有效抑制mst1/2 double-mutant小鼠的肝癌进展第53-57页
        3.4.1 HNF4α抑制mst1/2 double-mutant小鼠肝脏的肿大和成瘤第54页
        3.4.2 HNF4α回调mst1/2 double-mutant小鼠肝脏中上调的YAP1-TEAD下游靶基因第54-56页
        3.4.3 HNF4α抑制mst1/2 double-mutant小鼠肝脏的增殖能力第56-57页
第四章 结果与讨论第57-59页
参考文献第59-66页
致谢第66页

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