| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 引言 | 第10-11页 |
| 第一部分 文献综述 | 第11-19页 |
| 一、炎症与炎症相关性疾病 | 第11-15页 |
| (一)巨噬细胞与炎症 | 第11页 |
| (二)炎症细胞因子 | 第11-12页 |
| (三)其它炎症介质 | 第12-13页 |
| (四)炎症相关性疾病 | 第13-15页 |
| 二、LPS介导的炎症信号通路 | 第15-17页 |
| (一)NF-κB信号通路 | 第15-16页 |
| (二)IRF5信号通路 | 第16页 |
| (三)MAPKs信号通路 | 第16-17页 |
| (四)AMPK信号通路 | 第17页 |
| 三、炎症动物模型 | 第17-18页 |
| 四、本研究的目的及意义 | 第18-19页 |
| 第二部分 材料和方法 | 第19-29页 |
| 一、实验材料 | 第19-22页 |
| (一)细胞株 | 第19页 |
| (二)实验动物 | 第19页 |
| (三)中药化合物 | 第19页 |
| (四)抗体和诱导剂、抑制剂 | 第19-20页 |
| (五)实验仪器 | 第20页 |
| (六)实验试剂 | 第20-22页 |
| 二、实验方法 | 第22-29页 |
| (一)细胞培养方法 | 第22-23页 |
| (二)MTT分析 | 第23页 |
| (三)RNA的提取及逆转录 | 第23-24页 |
| (四)RT-PCR、RT-qPCR | 第24-26页 |
| (五)蛋白免疫印迹分析(WesternBlot) | 第26-27页 |
| (六)酶联免疫吸附分析(ELISA) | 第27页 |
| (七)NO含量测定 | 第27页 |
| (八)动物模型实验 | 第27-28页 |
| (九)统计学分析 | 第28-29页 |
| 第三部分 实验结果 | 第29-55页 |
| 一、TI110对LPS刺激的巨噬细胞细胞活力的影响 | 第29页 |
| 二、TI110对巨噬细胞IL-6表达和分泌的影响 | 第29-33页 |
| (一)TI110对巨噬细胞IL-6mRNA表达水平的影响 | 第29-31页 |
| (二)TI110对巨噬细胞IL-6分泌的影响 | 第31-33页 |
| 三、TI110对其它炎症细胞因子的影响 | 第33-37页 |
| (一)TI110对巨噬细胞TNF-α和IL-1βmRNA表达的影响 | 第33-35页 |
| (二)TI110对巨噬细胞TNF-α和IL-1β分泌的影响 | 第35-37页 |
| 四、TI110对抗炎细胞因子表达的影响 | 第37-40页 |
| (一)TI110对巨噬细胞IL-10和TGFβ1mRNA水平的影响 | 第37-38页 |
| (二)TI110对巨噬细胞IL-10和TGFβ1分泌的影响 | 第38-40页 |
| 五、TI110对INOS,COX2,HMGB1表达的影响 | 第40-43页 |
| (一)TI110对巨噬细胞iNOS表达和NO释放的影响 | 第40-42页 |
| (二)TI110对巨噬细胞COX2蛋白水平的影响 | 第42页 |
| (三)TI110对巨噬细胞HMGB1蛋白分泌水平的影响 | 第42-43页 |
| 六、TI110抗炎的分子机制研究 | 第43-50页 |
| (一)TI110对NF-κB信号通路的影响 | 第43-46页 |
| (二)TI110对IRF5信号通路的影响 | 第46-47页 |
| (三)TI110对MAPKs信号通路的影响 | 第47-48页 |
| (四)TI110对AMPK信号通路的影响 | 第48-50页 |
| 七、TI110对感染性休克小鼠的抗炎作用 | 第50-55页 |
| (一)感染性休克小鼠模型的建立 | 第50-51页 |
| (二)TI110对感染性休克小鼠生存率的影响 | 第51-52页 |
| (三)TI110对感染性休克小鼠血清炎症因子分泌的影响 | 第52-53页 |
| (四)TI110对感染性休克小鼠作用后肝脏组织学分析 | 第53-55页 |
| 第四部分 讨论 | 第55-57页 |
| 第五部分 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-68页 |
| 附录 | 第68-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 作者简介 | 第70页 |
