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阿托伐他汀预处理对pMCAO模型大鼠的神经保护作用及机制研究

缩略语表第6-9页
中文摘要第9-12页
英文摘要第12-14页
前言第15-17页
文献回顾第17-42页
第一部分 阿托伐他汀预处理对pMCAO模型大鼠早期的神经保护作用第42-51页
    前言第42页
    1 材料第42-43页
        1.1 实验动物第42-43页
        1.2 主要试剂第43页
        1.3 主要仪器和耗材第43页
    2 实验方法第43-47页
        2.1 动物分组与预处理第43-44页
        2.2 留取血清样本第44页
        2.3 pMCAO模型建立第44-45页
        2.4 神经功能评价第45-46页
        2.5 梗死体积测算第46页
        2.6 统计分析第46-47页
    3 结果第47-48页
        3.1 24 h内死亡率第47页
        3.2 24 h神经功能评分第47-48页
        3.3 梗死体积比例第48页
    4 讨论第48-51页
第二部分 阿托伐他汀预处理对SD大鼠VEGF、Ang-1、Ang-2表达水平的影响第51-57页
    前言第51页
    1 材料第51-52页
        1.1 实验动物第51页
        1.2 试剂第51-52页
        1.3 主要仪器第52页
    2 方法第52-53页
        2.1 动物分组与处理第52-53页
        2.2 标本采集第53页
        2.3 ELISA法检测血清中VEGF、Ang-1以及Ang-2浓度第53页
        2.4 统计分析第53页
    3 结果第53-55页
        3.1 血清VEGF水平变化第53-54页
        3.2 血清Ang-1水平变化第54-55页
        3.3 血清Ang-2水平变化第55页
    4 讨论第55-57页
第三部分 阿托伐他汀预处理对pMCAO模型大鼠脑内TLR4、NF-κB以及缺血半暗带VEGF、caspase-3表达和神经细胞凋亡的影响第57-76页
    前言第57-58页
    1 材料第58-60页
        1.1 实验动物第58页
        1.2 主要试剂第58-59页
        1.3 主要配制试剂及其配制方法第59-60页
        1.4 主要仪器和耗材第60页
    2 方法第60-67页
        2.1 动物分组与预处理第60-61页
        2.2 pMCAO模型建立第61页
        2.3 标本采集第61页
        2.4 TLR4和NF-κB的检测第61-66页
        2.5 caspase-3的免疫组化染色第66页
        2.6 Tunel染色第66-67页
        2.7 VEGF的免疫组化染色第67页
        2.8 统计分析第67页
    3 结果第67-73页
        3.1 各组大鼠脑内TLR4及NF-κB的表达第67-69页
        3.2 各组大鼠梗死周边区域caspase-3的表达第69-70页
        3.3 各组大鼠梗死周边区域神经细胞的凋亡第70-72页
        3.4 各组大鼠梗死周边区域VEGF的表达第72-73页
    4 讨论第73-76页
第四部分 阿托伐他汀预处理对肠道菌群的影响第76-88页
    前言第76-77页
    1 材料第77-78页
        1.1 实验动物第77页
        1.2 主要试剂第77-78页
        1.3 主要仪器和耗材第78页
    2 方法第78-83页
        2.1 动物分组与处理第78-79页
        2.2 pMCAO模型建立第79页
        2.3 标本采集第79页
        2.4 ELISA法检测脑组织中的IL-10以及IL-17浓度第79-80页
        2.5 肠道标本微生物多样性检测第80-83页
        2.6 统计分析第83页
    3 结果第83-86页
        3.1 脑组织中IL-10水平变化第83-84页
        3.2 脑组织中IL-17水平变化第84页
        3.3 肠道微生物基因组分类测序第84-86页
    4 讨论第86-88页
小结第88-89页
参考文献第89-109页
个人简历和研究成果第109-110页
致谢第110页

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