| 中英文缩略词表 | 第5-6页 |
| 中文摘要 | 第6-8页 |
| 英文摘要 | 第8-9页 |
| 前言 | 第10-13页 |
| 材料和方法 | 第13-22页 |
| 2.1 材料 | 第13-17页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第13页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第13-14页 |
| 2.1.3 主要试剂与耗材 | 第14页 |
| 2.1.4 主要溶液配方 | 第14-17页 |
| 2.2 方法 | 第17-22页 |
| 2.2.1 离体脑片海马场电位的记录方法 | 第17页 |
| 2.2.2 慢性应激模型的建立 | 第17-18页 |
| 2.2.3 旷场实验 | 第18-19页 |
| 2.2.4 水迷宫实验 | 第19页 |
| 2.2.5 western blot分子生物学方法 | 第19-21页 |
| 2.2.6 统计分析与图像处理 | 第21-22页 |
| 结果 | 第22-33页 |
| 3.1 DOI对BLA的长时程增强的调节作用 | 第22-23页 |
| 3.2 5-HT_(2A/2C)受体拮抗剂ritanserin作用于DOI在LTP改变.193.3 慢性应激对大鼠探究行为及焦虑水平的影响 | 第23-24页 |
| 3.3 慢性应激对大鼠探究行为及焦虑水平的影响 | 第24-27页 |
| 3.4 慢性应激对大鼠空间记忆的影响 | 第27-28页 |
| 3.5 慢性应激对 5-HT_(2A/2C)受体介导的长时程增强的作用 | 第28-30页 |
| 3.6 慢性应激大鼠杏仁核 5-HT_(2A)和 5-HT_(2c)受体的表达 | 第30-31页 |
| 3.7 慢性应激大鼠杏仁核PKC的表达 | 第31-33页 |
| 讨论 | 第33-37页 |
| 结论 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-42页 |
| 综述 | 第42-47页 |
| 参考文献 | 第45-47页 |
| 致谢 | 第47页 |
