| 英文缩略词表 | 第6-7页 |
| 中文摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-10页 |
| 引言 | 第11-12页 |
| 实验研究 | 第12-27页 |
| 1 实验材料 | 第12-14页 |
| 1.1 实验动物 | 第12页 |
| 1.2 主要试剂 | 第12-13页 |
| 1.3 主要药物 | 第13页 |
| 1.4 主要仪器 | 第13页 |
| 1.5 主要溶液的配制 | 第13-14页 |
| 2 实验方法 | 第14-17页 |
| 2.1 细胞培养板的包被 | 第14页 |
| 2.2 海马神经元原代培养 | 第14-15页 |
| 2.3 海马神经元细胞的鉴定 | 第15页 |
| 2.4 含药血清的制备 | 第15页 |
| 2.5 分组、造模及给药 | 第15-16页 |
| 2.6 指标检测 | 第16-17页 |
| 2.6.1 HCA检测GR,CRHR1,NR2A,NR2B蛋白的表达 | 第16页 |
| 2.6.2 HCA检测CaMKII,SynGap蛋白的表达 | 第16-17页 |
| 2.6.3 膜片钳电生理检测mEPSC | 第17页 |
| 2.7 统计学处理 | 第17页 |
| 3 实验结果 | 第17-24页 |
| 3.1 海马神经元形态特点及荧光鉴定结果 | 第17-18页 |
| 3.2 对GR、CRHR1蛋白表达的影响 | 第18-20页 |
| 3.3 对NR2A,NR2B蛋白表达的影响 | 第20-21页 |
| 3.4 对CaMKII,SynGap蛋白表达的影响 | 第21-22页 |
| 3.5 海马神经元mEPSC的记录结果 | 第22-24页 |
| 4 讨论 | 第24-27页 |
| 4.1 海马神经元损伤与糖尿病并发抑郁症的发生发展密切相关 | 第24页 |
| 4.2 NR是介导DD海马神经元可塑性障碍的关键位点 | 第24-25页 |
| 4.3 基于膜片钳技术检测mEPSC分析海马神经元的突触可塑性 | 第25-27页 |
| 结论 | 第27-28页 |
| 创新点 | 第28-29页 |
| 问题与展望 | 第29-30页 |
| 致谢 | 第30-31页 |
| 参考文献 | 第31-34页 |
| 综述 | 第34-42页 |
| 参考文献 | 第38-42页 |
