| 中文摘要 | 第4-7页 |
| abstract | 第7-9页 |
| 引言 | 第12-17页 |
| 参考文献 | 第14-17页 |
| 第一部分 miR-182/miR-7a和PRDM5在脊髓损伤大鼠中的表达研究 | 第17-42页 |
| 研究目的 | 第17页 |
| 材料和方法 | 第17-26页 |
| 1.材料 | 第17-19页 |
| 2.方法 | 第19-26页 |
| 结果 | 第26-33页 |
| 1.建立大鼠脊髓撞击损伤模型,BBB评分法评价脊髓神经运动功能：ASCI组运动功能明显减退 | 第26-28页 |
| 2.大鼠ASCI后,受损脊髓组织miR-182和miR-7a的表达下降,PRDM5的mRNA表达上升 | 第28-31页 |
| 3.大鼠ASCI后,损伤区脊髓组织PRDM5和c-caspase3的蛋白表达上升 | 第31-32页 |
| 4.大鼠ASCI后,miR-182/miR-7a表达和PRDM5表达负相关 | 第32-33页 |
| 讨论 | 第33-37页 |
| 小结 | 第37页 |
| 参考文献 | 第37-42页 |
| 第二部分 miR-182/miR-7a和PRDM5参与调控脊髓神经元细胞损伤的机制研究..31研究目的 | 第42-66页 |
| 研究目的 | 第42页 |
| 材料和方法 | 第42-48页 |
| 1.材料 | 第42-44页 |
| 2.方法 | 第44-48页 |
| 结果 | 第48-58页 |
| 1.脊髓神经元培养和受损SCN细胞模型建立 | 第48-50页 |
| 2.转染siRNA-PRDM5,受损SCN细胞凋亡率下降,PRDM5和c-caspase3表达下降 | 第50-52页 |
| 3.过表达miR-182和miR-7a,受损SCN细胞凋亡率下降,PRDM5和c-caspase表达下降 | 第52-57页 |
| 4.双荧光素酶报告基因实验结果：共转染PRDM53’UTR重组报告质粒和miR-182/miR-7a后荧光酶活性降低 | 第57-58页 |
| 讨论 | 第58-61页 |
| 小结 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-66页 |
| 第三部分 体内验证miR-182/miR-7a影响大鼠脊髓损伤的作用机制 | 第66-79页 |
| 研究目的 | 第66-67页 |
| 材料和方法 | 第67-69页 |
| 1.材料 | 第67页 |
| 2.实验方法 | 第67-69页 |
| 结果 | 第69-73页 |
| 1.BBB评分评价ASCI大鼠运动功能：鞘内注射miR-182agomir和miR-7a agomir促进脊髓功能恢复 | 第69-70页 |
| 2.ASCI大鼠鞘内注射miR-182agomir和miR-7a agomir,损伤区脊髓PRDM5的mRNA表达下降 | 第70-72页 |
| 3.ASCI大鼠鞘内注射miR-182agomir或miR-7a agomir,损伤区脊髓PRDM5和c-caspase3蛋白表达下降 | 第72-73页 |
| 讨论 | 第73-75页 |
| 小结 | 第75页 |
| 参考文献 | 第75-79页 |
| 结论 | 第79-80页 |
| 展望 | 第80-81页 |
| 综述1 microRNAs参与调控脊髓损伤转归 | 第81-94页 |
| 参考文献 | 第88-94页 |
| 综述2 脊髓损伤动物模型的研究进展 | 第94-105页 |
| 参考文献 | 第100-105页 |
| 攻读博士学位期间发表的论文 | 第105-106页 |
| 英文缩略语表 | 第106-108页 |
| 致谢 | 第108-109页 |
