| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 前言 | 第14-46页 |
| 1. 虫夏简介 | 第16-22页 |
| 1.1. 天然虫夏 | 第17-19页 |
| 1.1.1. 虫草分类 | 第17-18页 |
| 1.1.2. 虫草的市场价值 | 第18-19页 |
| 1.2. 人工养殖虫草 | 第19-22页 |
| 1.2.1. 液体培养 | 第19-21页 |
| 1.2.2. 人工栽培 | 第21-22页 |
| 2. 虫草中的活性成分研究进展 | 第22-26页 |
| 2.1. 虫草多糖的活性研究概况 | 第24-25页 |
| 2.2. 虫草多糖的结构研究概况 | 第25-26页 |
| 3. 多糖结构研究方法进展 | 第26-29页 |
| 3.1. 分子量测定 | 第26-27页 |
| 3.2. 单糖组成 | 第27页 |
| 3.3. 红外光谱分析法 | 第27-28页 |
| 3.4. 甲基化分析 | 第28页 |
| 3.5. 核磁共振分析 | 第28-29页 |
| 4. 寡糖的研究方法进展 | 第29-31页 |
| 4.1. 寡糖的降解方法 | 第29页 |
| 4.2. 寡糖的制备及结构研究 | 第29-30页 |
| 4.3. 液相质谱联用技术（LC-MS） | 第30-31页 |
| 5. 抗血管生成活性 | 第31-33页 |
| 6. 以细胞为基础系统研究促 FGF/FGFR 信号的活性 | 第33-35页 |
| 7. 基于综述本论文提出的假设及解决手段 | 第35-37页 |
| 参考文献 | 第37-46页 |
| 第二章 天然冬虫夏草中多糖的提取、纯化及理化性质研究 | 第46-81页 |
| 1. 实验材料 | 第47页 |
| 2. 实验步骤 | 第47-51页 |
| 2.1. 三种来源的天然冬虫夏草中多糖的提取 | 第47-49页 |
| 2.2. 总糖含量测定 | 第49页 |
| 2.3. 蛋白含量测定 | 第49页 |
| 2.4. 粗多糖的分离纯化 | 第49页 |
| 2.5. 分子量测定 | 第49页 |
| 2.6. 元素分析 | 第49-50页 |
| 2.7. 高效液相测定虫草多糖的单糖组成 | 第50-51页 |
| 2.8. 红外光谱分析 | 第51页 |
| 2.9. 醋酸纤维素电泳 | 第51页 |
| 3. 实验结果 | 第51-77页 |
| 3.1. 购自四川九寨沟的天然冬虫夏草的多糖提取及理化性质分析 | 第52-54页 |
| 3.2. 购自四川松潘县的天然冬虫夏草的多糖提取及理化性质分析 | 第54-56页 |
| 3.3. 购自青海玉树的天然冬虫夏草的多糖提取及理化性质分析 | 第56-58页 |
| 3.4. 僵蚕的多糖提取及理化性质分析 | 第58-59页 |
| 3.5. 四川九寨沟冬虫夏草的分离纯化 | 第59-65页 |
| 3.6. 分子量测定 | 第65-70页 |
| 3.7. 红外光谱分析 | 第70-71页 |
| 3.8. 高效液相测定虫草多糖的单糖组成 | 第71-75页 |
| 3.9. 元素分析 | 第75-76页 |
| 3.10. 醋酸纤维素电泳 | 第76-77页 |
| 4. 实验讨论 | 第77-78页 |
| 本章小结 | 第78-80页 |
| 参考文献 | 第80-81页 |
| 第三章 液体培养虫草菌种及其多糖的提取、理化性质分析 | 第81-114页 |
| 1. 实验部分 | 第81-85页 |
| 1.1. 三种菌种的扩增、培养、发酵及保藏 | 第82页 |
| 1.2. Paecilomyces hepialid 的扩增、培养及发酵 | 第82-83页 |
| 1.2.1. Hirsutella sinensis 的扩增、培养及发酵 | 第82页 |
| 1.2.2. 11Y-6 的扩增、培养及发酵 | 第82-83页 |
| 1.2.3. 菌种保藏及活化 | 第83页 |
| 1.3. 菌株中总多糖、胞内多糖及胞外多糖的提取 | 第83-84页 |
| 1.4. 粗多糖理化性质分析 | 第84页 |
| 1.5. 粗多糖的纯化 | 第84-85页 |
| 1.6. 分子量分析、元素分析和单糖组成分析 | 第85页 |
| 1.7. 红外光谱分析 | 第85页 |
| 1.8. 醋酸纤维素电泳 | 第85页 |
| 2. 实验结果 | 第85-110页 |
| 2.1. 三种菌株的形态、培养和发酵 | 第85-86页 |
| 2.2. 11Y 菌株的多糖提取及理化性质分析 | 第86-97页 |
| 2.2.1. 多糖的提取 | 第86-89页 |
| 2.2.2. 粗多糖理化性质分析 | 第89-90页 |
| 2.2.3. 单糖组成及元素分析结果 | 第90-96页 |
| 2.2.4. 多糖纯化 | 第96-97页 |
| 2.3. 蝙蝠蛾拟青霉 Paecilomyces hepialid 的多糖及理化性质分析 | 第97-102页 |
| 2.3.1. 多糖的提取 | 第97-98页 |
| 2.3.2. 粗多糖理化性质分析 | 第98-100页 |
| 2.3.3. 单糖组成结果 | 第100-101页 |
| 2.3.4. 多糖的纯化 | 第101-102页 |
| 2.4. 中华被毛孢 Hirsutella sinensis 的多糖提取及理化性质分析 | 第102-104页 |
| 2.4.1. 多糖的提取 | 第102页 |
| 2.4.2. 单糖组成结果 | 第102-104页 |
| 2.5. 三种菌种来源多糖的分子量分析 | 第104-107页 |
| 2.6. 红外光谱分析 | 第107-108页 |
| 2.7. 醋酸纤维素电泳 | 第108-110页 |
| 3. 实验讨论 | 第110-112页 |
| 4. 本章小结 | 第112-113页 |
| 参考文献 | 第113-114页 |
| 第四章 天然及人工虫草多糖的药理活性 | 第114-144页 |
| 1. 实验材料 | 第114页 |
| 2. 实验步骤 | 第114-117页 |
| 2.1. 细胞培养（Cell culture） | 第114-115页 |
| 2.2. 细胞增殖实验（Cell proliferation assay） | 第115页 |
| 2.3. 毛细管形成实验（Capillary tube formation assay） | 第115-116页 |
| 2.4. 细胞迁移实验（the transwell cell migration assay） | 第116页 |
| 2.5. 蛋白提取及 Western – blot 分析 | 第116-117页 |
| 3. 实验结果 | 第117-140页 |
| 3.1. 细胞毒实验 | 第117-121页 |
| 3.2. 抗血管生成活性 | 第121-128页 |
| 3.3. 细胞迁移实验 | 第128-130页 |
| 3.4. Western-blot 实验 | 第130页 |
| 3.5. 生物法检测天然和人工虫草多糖对 FGF / FGFR 信号影响（以 BaF3 FR1c 细胞为基础的模型系统） | 第130-140页 |
| 4. 实验讨论 | 第140-141页 |
| 5. 本章小结 | 第141-143页 |
| 参考文献 | 第143-144页 |
| 第五章 天然及人工虫草多糖结构研究 | 第144-185页 |
| 1. 实验部分 | 第146-147页 |
| 1.1. 寡糖酸降解及寡糖-苯胺衍生物的制备 | 第146页 |
| 1.2. 薄层层析色谱（TLC） | 第146页 |
| 1.3. 寡糖的制备及表征 | 第146页 |
| 1.4. 聚半乳糖醛酸的结构确定 | 第146-147页 |
| 1.5. 毛细管液相质谱联用分析寡糖-苯胺衍生物 | 第147页 |
| 1.6. 毛细管液相质谱联用分析单糖-PMP 衍生物 | 第147页 |
| 1.7. 1_~H-NMR 和13C-NMR 分析 | 第147页 |
| 1.8. 甲基化分析 | 第147页 |
| 2. 实验结果 | 第147-179页 |
| 2.1. 多糖酸降解条件摸索 | 第147-148页 |
| 2.2. 寡糖-苯胺衍生物的制备及 LC-MS 分析 | 第148-167页 |
| 2.2.1. 普通苯胺衍生物的比较 | 第148-162页 |
| 2.2.2. 同位素法分析样品 | 第162-166页 |
| 2.2.3. 虫草多糖中含有共价硫酸根 | 第166-167页 |
| 2.3. 寡糖的分离及表征 | 第167-172页 |
| 2.4. 聚半乳聚糖的发现和证明 | 第172-175页 |
| 2.5. NMR 分析 | 第175-176页 |
| 2.6. 甲基化分析 | 第176-179页 |
| 3. 实验讨论 | 第179-182页 |
| 4. 本章小结 | 第182-184页 |
| 参考文献 | 第184-185页 |
| 结语 | 第185-188页 |
| 创新点 | 第188-189页 |
| 附录 | 第189-193页 |
| 致谢 | 第193-194页 |
| 个人简历 | 第194页 |
| 已发表、待发表、参与发表的文章和专利 | 第194-196页 |
