| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第10-12页 |
| 前言 | 第12-15页 |
| 研究现状、成果 | 第12-14页 |
| 研究目的、方法 | 第14-15页 |
| 一、电压门控型钠通道在巨噬细胞表型偏移调节中的作用 | 第15-41页 |
| 1.1 对象和方法 | 第15-29页 |
| 1.1.1 细胞系 | 第15页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第15-17页 |
| 1.1.3 试剂配制 | 第17-18页 |
| 1.1.4 主要使用仪器及耗材 | 第18-19页 |
| 1.1.5 RAW264.7细胞中VGSCs表达情况的检测 | 第19-24页 |
| 1.1.6 低表达NaV1.4对RAW264.7细胞增殖、吞噬、迁移及表型标志物的影响 | 第24-26页 |
| 1.1.7 小鼠外周血单核细胞VGSCs表达水平检测 | 第26-28页 |
| 1.1.8 统计学分析 | 第28-29页 |
| 1.2 结果 | 第29-36页 |
| 1.2.1 RAW264.7细胞和小鼠外周血单核细胞中VGSCs的表达情况 | 第29-30页 |
| 1.2.2 低表达NaV1.4对巨噬细胞增殖、吞噬、迁移能力和表型标志物的影响 | 第30-36页 |
| 1.3 讨论 | 第36-40页 |
| 1.3.1 VGSCs在细胞中表达存在种属、组织和细胞特异性 | 第36-38页 |
| 1.3.2 巨噬细胞的经典激活和替代激活 | 第38-39页 |
| 1.3.3 VGSCs参与细胞功能的调控 | 第39-40页 |
| 1.4 小结 | 第40-41页 |
| 二、VGSCs阻断剂抑制高脂血症诱导的单核/巨噬细胞促炎症表型 | 第41-63页 |
| 2.1 对象和方法 | 第41-52页 |
| 2.1.1 实验动物和动脉粥样硬化模型建立 | 第41-43页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第43-44页 |
| 2.1.3 试剂配制 | 第44-45页 |
| 2.1.4 主要仪器及耗材 | 第45-46页 |
| 2.1.5 ApoE~(-/-)小鼠基因型鉴定 | 第46-48页 |
| 2.1.6 流式细胞术检测小鼠外周血单核细胞不同亚群比例 | 第48-49页 |
| 2.1.7 流式细胞术检测小鼠主动脉粥样斑块内浸润的巨噬细胞不同亚群比例 | 第49-50页 |
| 2.1.8 小鼠血脂含量酶联免疫分析(ELISA) | 第50-51页 |
| 2.1.9 统计学分析 | 第51-52页 |
| 2.2 结果 | 第52-58页 |
| 2.2.1 实验所需ApoE~(-/-)小鼠基因型鉴定均为纯合子 | 第52页 |
| 2.2.2 流式细胞术检测单核细胞亚群的设门方法 | 第52页 |
| 2.2.3 动脉粥样硬化小鼠外周血内单核细胞不同亚群的变化 | 第52-53页 |
| 2.2.4 巨噬细胞不同亚群在小鼠主动脉粥样斑块内的变化 | 第53-56页 |
| 2.2.5 苯妥英钠对小鼠血脂水平的影响 | 第56-58页 |
| 2.3 讨论 | 第58-62页 |
| 2.3.1 PHT调节小鼠外周血单核细胞亚群的变化 | 第58-61页 |
| 2.3.2 PHT对小鼠血脂水平无明显影响 | 第61-62页 |
| 2.4 小结 | 第62-63页 |
| 结论 | 第63-64页 |
| 局限性和研究展望 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-75页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第75-77页 |
| 综述 | 第77-92页 |
| 综述参考文献 | 第86-92页 |
| 致谢 | 第92页 |
