| 中文摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 英文缩写注释 | 第11-12页 |
| 第一章 前言 | 第12-14页 |
| 第二章 材料和方法 | 第14-26页 |
| 2.1 主要试剂及材料 | 第14-16页 |
| 2.1.1 细胞系 | 第14页 |
| 2.1.3 抗体 | 第14页 |
| 2.1.4 其他主要试剂及试剂盒 | 第14-15页 |
| 2.1.5 主要实验仪器 | 第15页 |
| 2.1.6 试剂配制 | 第15-16页 |
| 2.2 方法 | 第16-25页 |
| 2.2.1 HL-60细胞培养 | 第16页 |
| 2.2.2 慢病毒载体的构建 | 第16-17页 |
| 2.2.3 慢病毒载体对HL-60的毒性作用 | 第17页 |
| 2.2.4 慢病毒对HL-60转染效率的检测 | 第17页 |
| 2.2.5 慢病毒转染HL-60后WAVE1基因的表达 | 第17-20页 |
| 2.2.6 Western Blot检测转染前后HL-60细胞WAVE1蛋白表达 | 第20-23页 |
| 2.2.7 嘌呤霉素对HL-60细胞的毒性作用 | 第23页 |
| 2.2.8 慢病毒转染HL-60细胞及嘌呤霉素筛选 | 第23-24页 |
| 2.2.9 Western Blotting检测下调WAVE1后细胞自噬水平 | 第24页 |
| 2.2.10 透射电镜的标本的制备 | 第24页 |
| 2.2.11 CCK-8检测ADM下转染前后细胞的增殖活性 | 第24-25页 |
| 2.3 统计学处理 | 第25-26页 |
| 第三章 结果 | 第26-35页 |
| 3.1 重组慢病毒转染对细胞生长的影响 | 第26页 |
| 3.2 HL-60重组慢病毒转染效率的检测 | 第26-29页 |
| 3.3 下调WAVE1基因对HL-60细胞WAVE1表达的影响 | 第29-30页 |
| 3.4 嘌呤霉素筛选浓度的选择 | 第30-32页 |
| 3.5 嘌呤霉素筛选后转染效率的检测 | 第32-33页 |
| 3.6 下调WAVEl基因对阿霉素诱导HL-60细胞LC3-Ⅱ表达的影响 | 第33-34页 |
| 3.7 下调WAVE1基因表达对ADM诱导的HL-60细胞自噬小体形成的影响 | 第34页 |
| 3.8 下调WAVE1表达抑制自噬后对HL-60细胞增殖活性的影响 | 第34-35页 |
| 第四章 讨论 | 第35-38页 |
| 第五章 结论 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-43页 |
| 综述 | 第43-54页 |
| 参考文献 | 第49-54页 |
| 致谢 | 第54页 |
