| 中文摘要 | 第2-4页 |
| Abstract | 第4-6页 |
| 中文文摘 | 第7-19页 |
| 绪论 | 第19-31页 |
| 一、多囊卵巢综合征定义与诊断标准 | 第19-20页 |
| 二、多囊卵巢综合征病理生理学机制 | 第20-26页 |
| (一) HPA和HPO轴在多囊卵巢综合征神经内分泌紊乱中作用 | 第20-23页 |
| (二) 多囊卵巢综合征代谢功能紊乱 | 第23-26页 |
| 三、多囊卵巢综合征相关的分子机制 | 第26-29页 |
| 四、多囊卵巢综合征的治疗方法 | 第29-31页 |
| (一) 生活方式的改变 | 第29页 |
| (二) 胰岛素增敏药物的应用 | 第29-31页 |
| 第一章 HIF-1信号通路在PCOS大鼠卵巢中的抑制作用 | 第31-51页 |
| 1 材料与方法 | 第32-44页 |
| 1.1 实验动物 | 第32页 |
| 1.2 主要实验仪器 | 第32-33页 |
| 1.3 主要实验试剂 | 第33-35页 |
| 1.4 实验步骤 | 第35-36页 |
| 1.5 实验方法 | 第36-43页 |
| 1.6 统计 | 第43-44页 |
| 2 实验结果 | 第44-49页 |
| 2.1 PCOS大鼠形成过程体重的变化 | 第44-45页 |
| 2.2 PCOS大鼠卵巢重量及其组织学的变化 | 第45-46页 |
| 2.3 PCOS大鼠卵巢ET-2和HIF-1 mRNA水平的变化 | 第46-47页 |
| 2.4 PCOS大鼠卵巢ET-2和HIF-1蛋白水平的变化 | 第47-48页 |
| 2.5 PCOS大鼠卵巢HIF羟脯化酶活性的变化 | 第48-49页 |
| 3 讨论 | 第49-51页 |
| 第二章 DMBG对PCOS大鼠卵巢HIF-1/ET-2信号通路的影响 | 第51-69页 |
| 1 材料与方法 | 第52-58页 |
| 1.1 实验动物 | 第52页 |
| 1.2 主要实验仪器 | 第52页 |
| 1.3 主要实验试剂 | 第52-54页 |
| 1.4 实验步骤 | 第54页 |
| 1.5 实验方法 | 第54-58页 |
| 1.6 统计 | 第58页 |
| 2 实验结果 | 第58-65页 |
| 2.1 DMBG对PCOS大鼠卵巢卵泡发育的保护作用 | 第58-59页 |
| 2.2 DMBG对PCOS大鼠血清激素的影响 | 第59-62页 |
| 2.3 DMBG对PCOS大鼠卵巢HIF-1和ET-2免疫组化的影响 | 第62-63页 |
| 2.4 DMBG对PCOS大鼠卵巢HIF-1和ET-2蛋白水平的影响 | 第63-64页 |
| 2.5 DMBG对PCOS大鼠卵巢HIF-1和ET-2 mRNA水平的影响 | 第64-65页 |
| 2.6 DMBG对PCOS大鼠卵巢HIF羟脯化酶活性的影响 | 第65页 |
| 3 讨论 | 第65-69页 |
| 第三章 DMBG对PCOS大鼠卵巢Akt/HIF-1信号通路的影响 | 第69-86页 |
| 1 材料与方法 | 第70-74页 |
| 1.1 实验动物 | 第70页 |
| 1.2 主要实验仪器 | 第70-71页 |
| 1.3 主要实验试剂 | 第71-72页 |
| 1.4 实验步骤 | 第72-73页 |
| 1.5 实验方法 | 第73页 |
| 1.6 统计 | 第73-74页 |
| 2 实验结果 | 第74-83页 |
| 2.1 大鼠动情周期变化 | 第74页 |
| 2.2 PCOS大鼠卵巢组织形态学鉴定 | 第74-75页 |
| 2.3 DMBG对PCOS大鼠卵巢HIF-1和ET-2免疫组化的影响 | 第75-77页 |
| 2.4 DMBG对PCOS大鼠卵巢HIF-1和ET-2蛋白水平的影响 | 第77-78页 |
| 2.5 DMBG对PCOS大鼠卵巢Akt免疫组化的影响 | 第78-82页 |
| 2.6 DMBG对PCOS大鼠卵巢Akt蛋白表达的影响 | 第82-83页 |
| 3 讨论 | 第83-86页 |
| 第四章 PCOS大鼠卵巢中INS信号通路的缺陷与DMBG的保护作用 | 第86-103页 |
| 1 材料与方法 | 第87-90页 |
| 1.1 实验动物 | 第87页 |
| 1.2 主要实验仪器 | 第87页 |
| 1.3 主要实验试剂 | 第87-88页 |
| 1.4 实验步骤 | 第88-89页 |
| 1.5 实验方法 | 第89页 |
| 1.6 统计 | 第89-90页 |
| 2 实验结果 | 第90-100页 |
| 2.1 DMBG对PCOS大鼠血清T的影响 | 第90-91页 |
| 2.2 DMBG对PCOS大鼠卵巢卵泡发育与结构的影响 | 第91-92页 |
| 2.3 DMBG对PCOS大鼠卵巢IRS-2免疫组化的影响 | 第92-94页 |
| 2.4 DMBG对PCOS大鼠卵巢PI-3K免疫组化的影响 | 第94-96页 |
| 2.5 DMBG对PCOS大鼠卵巢IRS-2和PI-3K蛋白水平的影响 | 第96-98页 |
| 2.6 DMBG对PCOS鼠卵巢PDK-1和mTOR蛋白水平的影响 | 第98-100页 |
| 3 讨论 | 第100-103页 |
| 第五章 NLRP3炎症小体的激活在大鼠PCOS发生与干预中的作用 | 第103-121页 |
| 1 材料与方法 | 第104-110页 |
| 1.1 实验动物 | 第104页 |
| 1.2 主要实验仪器 | 第104-105页 |
| 1.3 主要实验试剂 | 第105-106页 |
| 1.4 实验步骤 | 第106页 |
| 1.5 实验方法 | 第106-110页 |
| 1.6 统计 | 第110页 |
| 2 实验结果 | 第110-119页 |
| 2.1 DMBG对PCOS大鼠卵巢卵泡发育与结构的影响 | 第110-113页 |
| 2.2 血清炎症因子在PCOS大鼠及其干预过程的变化 | 第113页 |
| 2.3 NLRP3和ASC mRNA在PCOS大鼠卵巢及其干预的表达变化 | 第113-114页 |
| 2.4 Caspase-1蛋白在PCOS大鼠卵巢及其干预的表达变化 | 第114-115页 |
| 2.5 Caspase-1活性和IL-1β合成在PCOS大鼠卵巢及其干预的变化 | 第115-117页 |
| 2.6 SOD、过氧化氢酶活性和LPO含量在PCOS大鼠卵巢及其干预的变化 | 第117-119页 |
| 3 讨论 | 第119-121页 |
| 第六章 INS对体外培养的大鼠卵巢颗粒细胞中HIF-1信号通路的影响 | 第121-136页 |
| 1 材料与方法 | 第122-125页 |
| 1.1 实验动物 | 第122页 |
| 1.2 主要实验仪器 | 第122-123页 |
| 1.3 主要实验试剂 | 第123-124页 |
| 1.4 实验步骤 | 第124-125页 |
| 1.5 实验方法 | 第125页 |
| 1.6 统计 | 第125页 |
| 2 实验结果 | 第125-133页 |
| 2.1 INS对卵巢颗粒细胞中HIF-1/ET-2蛋白表达的影响 | 第125-127页 |
| 2.2 INS对卵巢颗粒细胞中Akt表达的影响 | 第127-128页 |
| 2.3 抑制剂Wor对卵巢颗粒细胞中HIF-1和ET-2蛋白表达的影响 | 第128-129页 |
| 2.4 抑制剂Rap对卵巢颗粒细胞中HIF-1和ET-2蛋白表达的影响 | 第129-131页 |
| 2.5 抑制剂Wor对卵巢颗粒细胞中AKT蛋白表达的影响 | 第131-132页 |
| 2.6 抑制剂Rap对卵巢颗粒细胞中AKT蛋白表达的影响 | 第132-133页 |
| 3 讨论 | 第133-136页 |
| 结论 | 第136-138页 |
| 附录1 符号缩略表 | 第138-141页 |
| 参考文献 | 第141-161页 |
| 攻读学位期间承担的科研任务与主要成果 | 第161-163页 |
| 致谢 | 第163-164页 |
| 个人简历 | 第164-165页 |
