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利用基因工程改造的大肠杆菌合成蒎烯

摘要第3-5页
Abstract第5-6页
英文缩略词表第12-13页
第一章 前言第13-28页
    1 蒎烯第13-17页
        1.1 简介第13页
        1.2 用途第13-17页
            1.2.1 高能燃料第14-16页
            1.2.2 药理活性物第16页
            1.2.3 高分子材料第16页
            1.2.4 合成香料第16-17页
    2 合成生物学简介第17-21页
        2.1 合成生物学概述第17-18页
        2.2 基因(组)编辑技术在合成生物学中的应用第18-19页
        2.3 合成生物学在生物制造方面的应用第19-21页
            2.3.1 合成天然药物第19-20页
            2.3.2 合成替代能源第20-21页
    3 萜类化合物的生物合成研究进展第21-25页
        3.1 萜类化合物分类及应用第21页
        3.2 萜类的代谢途径第21-23页
        3.3 萜类化合物的合成生物学研究进展第23-24页
        3.4 蒎烯的微生物代谢合成研究进展第24-25页
    4 研究思路及研究意义第25-28页
        4.1 研究思路第25-26页
        4.2 研究意义第26-28页
第二章 GPPS和PS共表达及融合表达载体的构建第28-48页
    1 实验材料第28-30页
        1.1 菌株和质粒第28页
        1.2 主要试剂第28-29页
        1.3 培养基及主要溶液第29-30页
        1.4 主要仪器第30页
    2 方法第30-41页
        2.1 目的基因的获取第30页
        2.2 共表达载体的构建第30-36页
            2.2.1 目的基因的转化第31页
            2.2.2 质粒提取第31-32页
            2.2.3 目的基因PCR扩增并引入酶切位点第32页
            2.2.4 PCR产物凝胶电泳及胶回收第32-33页
            2.2.5 TA克隆第33页
            2.2.6 连接产物的转化第33-34页
            2.2.7 目的重组质粒的筛选与鉴定第34页
            2.2.8 目的片段的双酶切与胶回收第34-35页
            2.2.9 构建中间载体pETDuet1-GPPS第35页
            2.2.10 中间载体pETDuet1-GPPS的酶切鉴定第35页
            2.2.11 构建共表达载体pETDuet1-GPPS-PS第35-36页
        2.3 融合表达载体的构建第36-40页
            2.3.1 融合PCR构建GPPS-PS融合表达基因第36-38页
            2.3.2 目的基因双酶切第38页
            2.3.3 酶切产物清洁回收第38页
            2.3.4 构建融合表达载体第38-39页
            2.3.5 融合表达载体酶切鉴定第39页
            2.3.6 GPPS和PS共表达及融合表达菌株的构建第39页
            2.3.7 SDS-PAGE验证基因的表达第39-40页
        2.4 评价外源基因表达对菌生长的影响第40页
        2.5 检测蒎烯产量第40-41页
            2.5.1 菌液培养第40页
            2.5.2 确定检测方法第40-41页
            2.5.3 GC-MS检测蒎烯第41页
    3 结果第41-47页
        3.1 人工合成目的基因第41-42页
        3.2 共表达载体的构建与基因表达第42页
        3.3 融合表达载体的构建与基因表达第42-43页
        3.4 外源基因表达对工程菌生长的影响第43页
        3.5 GC-MS检测蒎烯第43-47页
            3.5.1 蒎烯的定性检测第43-44页
            3.5.2 制作蒎烯浓度标准曲线第44-45页
            3.5.3 蒎烯检测方法的重复性考察第45-46页
            3.5.4 融合表达及共表达菌株产蒎烯能力的检测第46-47页
    4 本章小结第47-48页
第三章 MVA代谢途径产蒎烯工程菌的构建第48-70页
    1 实验材料第48-51页
        1.1 菌株和质粒第48页
        1.2 主要试剂第48-49页
        1.3 培养基及主要溶液第49-50页
        1.4 主要仪器第50-51页
    2 方法第51-63页
        2.1 MVA上游途径表达载体的构建第51-54页
            2.1.1 mvaE、mvaS基因的获取第51页
            2.1.2 目的基因及载体双酶切第51-52页
            2.1.3 酶连目的基因及表达载体第52页
            2.1.4 MVA上游途径表达载体的鉴定第52页
            2.1.5 SDS-PAGE检测基因表达第52-53页
            2.1.6 mvaS基因点突变第53-54页
        2.2 MVA下游途径表达载体的构建第54-60页
            2.2.1 酿酒酵母基因组的提取第54页
            2.2.2 目的基因的克隆第54-55页
            2.2.3 将目的基因连接到pMD18-T载体上第55页
            2.2.4 目的基因的改造第55-56页
            2.2.5 BioBrick单基因表达载体的构建第56-57页
            2.2.6 BioBrick方法构建多基因共表达载体第57-58页
            2.2.7 SDS-PAGE验证目的基因的表达第58页
            2.2.8 构建多基因串联共表达载体第58-60页
            2.2.9 SDS-PAGE验证目的基因的表达第60页
        2.3 构建表达载体pACYCDuet-mvaE/S-GPPS-PS第60-62页
            2.3.1 GPPS-PS融合基因PCR第60-61页
            2.3.2 DNA片段双酶切第61页
            2.3.3 酶连目的基因及载体第61页
            2.3.4 酶切鉴定第61-62页
            2.3.5 SDS-PAGE验证目的基因的表达第62页
        2.4 构建表达载体pACYCDuet-mvaE/S_(G110)-GPPS-PS第62页
        2.5 含MVA代谢途径产蒎烯工程菌的构建第62-63页
        2.6 工程菌产蒎烯能力的检测第63页
            2.6.1 工程菌的摇床培养第63页
            2.6.2 GC-MS检测蒎烯第63页
    3 实验结果第63-69页
        3.1 载体pACYCDuet-mvaE/S及蛋白表达验证第63-64页
        3.2 mvaS点突变第64-65页
        3.3 点突变消除Xba Ⅰ酶切位点第65页
        3.4 BioBrick单基因表达载体的构建及基因表达验证第65-66页
        3.5 BioBrick方法构建MVA途径共表达载体第66页
        3.6 多顺反子模型原理构建MVA下游途径共表达载体第66-67页
        3.7 pACYCDuet-mvaE/S-GPPS-PS载体的构建与鉴定第67-68页
        3.8 pACYCDuet-mvaE/S_(G110)-GPPS-PS载体的构建与鉴定第68页
        3.9 工程菌产蒎烯能力的检测第68-69页
    4 本章小结第69-70页
第四章 CRISPR/Cas9技术改造大肠杆菌基因组第70-87页
    1 实验材料第70-72页
        1.1 质粒和菌株第70页
        1.2 主要试剂第70-71页
        1.3 培养基及主要溶液第71页
        1.4 主要仪器第71-72页
    2 方法第72-83页
        2.1 sgRNA的设计与鉴定第72-75页
            2.1.1 sgRNA设计第72页
            2.1.2 sgRNA体外转录第72-74页
            2.1.3 PCR扩增底物DNA第74页
            2.1.4 sgRNA体外切割效率验证第74-75页
        2.2 MVA上游途径基因敲入第75-81页
            2.2.1 pFG-sgRNA(ES)载体的构建第75-76页
            2.2.2 启动子替换第76-77页
            2.2.3 pFG-sgRNA(ES)-mvaE/S质粒载体的构建第77-78页
            2.2.4 含质粒pFG-sgRNA(ES)-mvaE/S的大肠杆菌感受态细胞的制备第78-79页
            2.2.5 pFN-Cas9-A转化含质粒pFG-sgRNA(ES)-mvaE/S的大肠杆菌感受态细胞第79页
            2.2.6 基因敲入第79页
            2.2.7 基因敲入鉴定第79-81页
            2.2.8 质粒的清除第81页
        2.3 MVA下游途径基因敲入第81-83页
            2.3.1 pFG-sgRNA(EI)载体的构建第81-82页
            2.3.2 启动子替换第82页
            2.3.3 pFG-sgRNA(EI)-ERG-IDI质粒载体的构建第82页
            2.3.4 MVA下游基因敲入第82页
            2.3.5 基因敲入鉴定第82页
            2.3.6 质粒的清除第82-83页
    3 实验结果第83-86页
        3.1 Cas9体外酶切验证sgRNA效率第83页
        3.2 pFG-sgRNA(ES)-mvaE/S载体的鉴定第83-84页
        3.3 pFG-sgRNA(EI)-ERG-IDI载体的鉴定第84页
        3.4 MVA上游基因敲入鉴定结果第84-85页
        3.5 MVA下游基因敲入鉴定结果第85-86页
    4 本章小结第86-87页
结论第87-88页
讨论第88-91页
参考文献第91-95页
致谢第95-97页
硕士期间发表论文及申请专利第97页

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