| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 缩略词（Abbreviation) | 第10-12页 |
| 引言 | 第12-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-28页 |
| 1 植物的抗病性反应 | 第14-15页 |
| 1.1 基础抗病性 | 第14-15页 |
| 1.2 诱导性抗性 | 第15页 |
| 1.3 非宿主抗性 | 第15页 |
| 2 植物抗病反应中的信号分子 | 第15-20页 |
| 2.1 Ca~(2+) | 第15-16页 |
| 2.2 活性氧(ROS) | 第16-17页 |
| 2.3 水杨酸(SA) | 第17-18页 |
| 2.4 茉莉酸/乙烯(JA/ET) | 第18-19页 |
| 2.5 一氧化氮(NO) | 第19页 |
| 2.6 生长素(Auxin) | 第19-20页 |
| 3 植物抗病防卫反应的基本信号通路 | 第20-28页 |
| 3.1 水杨酸信号转导通路 | 第21页 |
| 3.2 茉莉酸和乙烯信号转导通路 | 第21-22页 |
| 3.3 SA途径和JA/ET途径的互作 | 第22-28页 |
| 3.3.1 SA和JA/ET信号转导途径交叉对话的关键调控因子 | 第23-28页 |
| 第二章 葡萄4个水杨酸、茉莉酸信号途径相关基因的克隆 | 第28-44页 |
| 摘要 | 第28-30页 |
| 1 材料和方法 | 第30-37页 |
| 1.1 材料 | 第30-31页 |
| 1.1.1 植物材料 | 第30页 |
| 1.1.2 菌株及载体 | 第30页 |
| 1.1.3 生化试剂 | 第30-31页 |
| 1.1.4 引物 | 第31页 |
| 1.2 方法 | 第31-37页 |
| 1.2.1 引物设计 | 第31-32页 |
| 1.2.2 葡萄总RNA的提取 | 第32-33页 |
| 1.2.3 总RNA中DNA的消化 | 第33页 |
| 1.2.4 cDNA第一链的合成 | 第33-34页 |
| 1.2.5 葡萄4个SA、JA信号转导途径相关基因的ORF区扩增 | 第34页 |
| 1.2.6 PCR产物的回收 | 第34-35页 |
| 1.2.7 目的片段T载体的连接,转化及鉴定 | 第35-36页 |
| 1.2.8 葡萄SA、JA信号途径相关基因NPR1和COI1 cDNA的3'RACE扩增 | 第36-37页 |
| 2 结果与分析 | 第37-41页 |
| 2.1 葡萄各组织总RNA提取纯度检测 | 第38页 |
| 2.2 葡萄4个SA、JA信号转导途径相关基因的ORF区克隆结果 | 第38页 |
| 2.3 葡萄2个SA、JA信号转导途径相关基因的3’RACE克隆结果 | 第38-39页 |
| 2.4 葡萄NPR1、PR1、COI1和LOX2氨基酸序列分析 | 第39-41页 |
| 3 讨论 | 第41-44页 |
| 第三章 4个葡萄水杨酸、茉莉酸信号转导途径相关基因的表达分析 | 第44-58页 |
| 摘要 | 第44-45页 |
| 1 材料与方法 | 第45-48页 |
| 1.1 材料 | 第45-46页 |
| 1.1.1 植物材料 | 第45页 |
| 1.1.2 生化试剂 | 第45-46页 |
| 1.2 方法 | 第46-48页 |
| 1.2.1 实验材料处理 | 第46-47页 |
| 1.2.2 RNA的提取与纯化 | 第47页 |
| 1.2.3 cDNA合成 | 第47页 |
| 1.2.4 半定量RT-PCR | 第47页 |
| 1.2.5 荧光定量PCR检测 | 第47-48页 |
| 1.2.6 数据分析 | 第48页 |
| 2 结果与分析 | 第48-56页 |
| 2.1 葡萄总RNA提取及纯度检测 | 第49页 |
| 2.2 几个基因的RT-PCR扩增检测 | 第49-51页 |
| 2.3 NPR1、PR1、COI1和LOX2 4个基因的表达分析 | 第51-56页 |
| 2.3.1 不同浓度SA和JA处理后4个基因的表达 | 第51-54页 |
| 2.3.2 SA和JA处理后基因的时程表达 | 第54-55页 |
| 2.3.3 SA和JA处理对彼此信号途径的影响 | 第55-56页 |
| 3 讨论 | 第56-58页 |
| 全文总结 | 第58-60页 |
| 创新点 | 第60-62页 |
| 参考文献 | 第62-74页 |
| 附录 | 第74-76页 |
| 攻读硕士期间论文发表与投稿情况 | 第76-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
| 附件 | 第79页 |
