| 摘要 | 第10-13页 |
| Abstract | 第13-15页 |
| 第一章 绪论 | 第17-68页 |
| 1.1 组织工程支架 | 第17-30页 |
| 1.1.1 主要的组织工程材料类型 | 第18-22页 |
| 1.1.1.1 天然的高聚物 | 第18-19页 |
| 1.1.1.2 人工合成的高聚物 | 第19-22页 |
| 1.1.1.3 无机材料 | 第22页 |
| 1.1.2 组织工程多孔支架的制备方法 | 第22-24页 |
| 1.1.2.1 改进的适度温度下热压/粒子浸出技术 | 第22-23页 |
| 1.1.2.2 常温模压/粒子浸出制备技术 | 第23页 |
| 1.1.2.3 常温注塑成型/粒子浸出制备技术 | 第23-24页 |
| 1.1.3 PLGA多孔支架的性能 | 第24-29页 |
| 1.1.3.1 PLGA支架材料的力学性能 | 第24-26页 |
| 1.1.3.1.1 共聚物组分的影响 | 第24-25页 |
| 1.1.3.1.2 干/湿状态的影响 | 第25页 |
| 1.1.3.1.3 PLGA支架孔隙率的影响 | 第25-26页 |
| 1.1.3.1.4 PLGA支架孔形状的影响 | 第26页 |
| 1.1.3.1.5 其它因素的影响 | 第26页 |
| 1.1.3.2 PLGA支架材料的降解行为 | 第26-29页 |
| 1.1.3.2.1 PLGA支架材料体外降解的三阶段 | 第26-27页 |
| 1.1.3.2.2 孔径、孔隙率对PLGA支架降解行为的影响 | 第27-28页 |
| 1.1.3.2.3 其它因素的影响 | 第28-29页 |
| 1.1.3.2.3.1 PLGA共聚物的组成 | 第28页 |
| 1.1.3.2.3.2 PLGA共聚物的结晶度 | 第28页 |
| 1.1.3.2.3.3 温度和pH | 第28-29页 |
| 1.1.3.2.3.4 力学刺激 | 第29页 |
| 1.1.3.2.3.5 体内降解行为 | 第29页 |
| 1.1.4 组织工程支架的表面修饰 | 第29-30页 |
| 1.2 材料表面拓扑形貌的细胞响应行为 | 第30-37页 |
| 1.2.1 纳米尺度拓扑形貌 | 第30-33页 |
| 1.2.1.1 细胞黏附 | 第30-31页 |
| 1.2.1.2 细胞增殖 | 第31-32页 |
| 1.2.1.3 细胞迁移 | 第32页 |
| 1.2.1.4 细胞分化 | 第32-33页 |
| 1.2.2 微米尺度拓扑形貌 | 第33-37页 |
| 1.2.2.1 细胞黏附 | 第33-35页 |
| 1.2.2.2 细胞增殖 | 第35页 |
| 1.2.2.3 细胞迁移 | 第35-36页 |
| 1.2.2.4 细胞分化 | 第36-37页 |
| 1.3 组织工程双层支架用于修复骨/软骨缺损 | 第37-44页 |
| 1.4 课题的提出 | 第44-47页 |
| 参考文献 | 第47-68页 |
| 第二章 微米拓扑形貌的尺寸对骨髓基质干细胞的响应行为的影响 | 第68-84页 |
| 2.1 前言 | 第68-69页 |
| 2.2 实验部分 | 第69-74页 |
| 2.2.1 原料与试剂 | 第69-70页 |
| 2.2.2 PLGA微米拓扑阵列的制备 | 第70页 |
| 2.2.3 PLGA膜的表征 | 第70-71页 |
| 2.2.4 细胞的分离和培养 | 第71-72页 |
| 2.2.5 细胞的肌动蛋白、纽蛋白和细胞核荧光染色 | 第72页 |
| 2.2.6 骨髓基质干细胞的成骨分化 | 第72-73页 |
| 2.2.7 MTT表征细胞活力 | 第73-74页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第74-79页 |
| 2.4 本章小结 | 第79-80页 |
| 参考文献 | 第80-84页 |
| 第三章 利用微柱阵列控制骨髓基质干细胞的细胞核形状 | 第84-105页 |
| 3.1 前言 | 第84-85页 |
| 3.2 实验部分 | 第85-90页 |
| 3.2.1 原料与试剂 | 第85-86页 |
| 3.2.2 PLGA微柱阵列的制备 | 第86-87页 |
| 3.2.3 PLGA膜的表征 | 第87页 |
| 3.2.4 细胞的分离和培养 | 第87-89页 |
| 3.2.5 细胞骨架和细胞核荧光染色 | 第89页 |
| 3.2.6 骨髓基质干细胞的成骨分化 | 第89-90页 |
| 3.2.7 MTT表征细胞活力 | 第90页 |
| 3.2.8 细胞核形状的定量表征 | 第90页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第90-102页 |
| 3.3.1 骨髓基质干细胞核变形现象的发现 | 第90-94页 |
| 3.3.2 骨髓基质干细胞核形状的控制 | 第94-97页 |
| 3.3.3 核变形的普适性与细胞种类依赖性 | 第97-102页 |
| 3.4 本章小结 | 第102-104页 |
| 参考文献 | 第104-105页 |
| 第四章 组织工程三维多孔支架孔表面微米拓扑形貌的构建 | 第105-125页 |
| 4.1 前言 | 第105-107页 |
| 4.2 实验部分 | 第107-112页 |
| 4.2.1 原料与试剂 | 第107-108页 |
| 4.2.2 带微米拓扑形貌的石蜡球致孔剂的制备 | 第108页 |
| 4.2.3 三维多孔支架的制备与表征 | 第108-109页 |
| 4.2.4 骨髓基质干细胞的分离和培养 | 第109-110页 |
| 4.2.5 MTT表征细胞活力 | 第110页 |
| 4.2.6 骨髓基质干细胞的成骨分化 | 第110-111页 |
| 4.2.7 多孔支架中细胞数量的测量 | 第111-112页 |
| 4.2.8 碱性磷酸酶的定量测定 | 第112页 |
| 4.2.9 统计分析 | 第112页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第112-119页 |
| 4.3.1 表面带有微米凹坑的石蜡球致孔剂的制备 | 第112-114页 |
| 4.3.2 孔表面带有微米凸起的组织工程三维多孔支架的制备 | 第114-115页 |
| 4.3.3 三维多孔支架孔表面细胞的黏附和增殖 | 第115-117页 |
| 4.3.4 三维多孔支架孔表面干细胞的成骨分化 | 第117-119页 |
| 4.4 本章小结 | 第119-120页 |
| 参考文献 | 第120-125页 |
| 第五章 新型支架致孔剂“糖粘盐”粒子的制备与相应三维多孔支架的研究 | 第125-138页 |
| 5.1 前言 | 第125-126页 |
| 5.2 实验部分 | 第126-131页 |
| 5.2.1 原料与试剂 | 第126-127页 |
| 5.2.2 “糖粘盐”致孔剂的制备 | 第127页 |
| 5.2.3 三维多孔支架的制备与表征 | 第127-128页 |
| 5.2.4 骨髓基质干细胞的分离和培养 | 第128-129页 |
| 5.2.5 MTT表征细胞活力 | 第129页 |
| 5.2.6 骨髓基质干细胞的成骨分化 | 第129-130页 |
| 5.2.7 多孔支架中细胞数量的测量 | 第130-131页 |
| 5.2.8 碱性磷酸酶的定量测定 | 第131页 |
| 5.2.9 统计分析 | 第131页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第131-136页 |
| 5.3.1 “糖粘盐”致孔剂的制备 | 第131-132页 |
| 5.3.2 用“糖粘盐”致孔剂制备三维多孔支架 | 第132-135页 |
| 5.3.3 三维多孔支架中骨髓基质干细胞的行为 | 第135-136页 |
| 5.4 本章小结 | 第136-137页 |
| 参考文献 | 第137-138页 |
| 第六章 PLGA支架材料生物相容性及降解行为研究 | 第138-154页 |
| 6.1 前言 | 第138页 |
| 6.2 实验部分 | 第138-143页 |
| 6.2.1 原料与试剂 | 第138-140页 |
| 6.2.2 实验动物 | 第140页 |
| 6.2.3 新西兰兔骨髓基质干细胞的获取 | 第140-141页 |
| 6.2.4 PLGA支架的制备 | 第141页 |
| 6.2.5 PLGA支架与细胞复合体的构建与表征 | 第141页 |
| 6.2.6 PLGA支架载细胞的动态观察 | 第141页 |
| 6.2.7 PLGA浸提液的细胞毒性 | 第141-142页 |
| 6.2.8 PLGA浸提液血液相容性 | 第142页 |
| 6.2.9 PLGA支架体内植入与降解 | 第142页 |
| 6.2.10 PLGA支架中山羊BMSC与平面培养的肋软骨细胞共培养体外诱导向成软骨分化 | 第142-143页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第143-150页 |
| 6.3.1 PLGA支架与细胞复合体的构建 | 第143-144页 |
| 6.3.2 培养于PLGA支架中的细胞的动态观察 | 第144-145页 |
| 6.3.3 PLGA支架材料浸提液的细胞毒性 | 第145-146页 |
| 6.3.4 PLGA浸提液的血液相容性 | 第146页 |
| 6.3.5 PLGA支架材料的体内植入与降解 | 第146-148页 |
| 6.3.6 PLGA支架材料中山羊BMSC与平面培养的肋软骨细胞共培养体外诱导向成软骨分化 | 第148-150页 |
| 6.4 本章小结 | 第150-152页 |
| 参考文献 | 第152-154页 |
| 第七章 不同孔隙率分布双层支架修复兔关节软骨/软骨下骨缺损 | 第154-185页 |
| 7.1 前言 | 第154-156页 |
| 7.2 实验部分 | 第156-165页 |
| 7.2.1 原料与试剂 | 第156-158页 |
| 7.2.2 PLGA双层支架的制备 | 第158页 |
| 7.2.3 PLGA双层支架力学性能的测试 | 第158页 |
| 7.2.4 实验动物 | 第158页 |
| 7.2.5 骨髓基质干细胞的分离、培养与传代 | 第158-159页 |
| 7.2.6 细胞示踪标记 | 第159页 |
| 7.2.7 体外接种细胞及其电镜表征 | 第159页 |
| 7.2.8 动物模型制备 | 第159-160页 |
| 7.2.9 取材及组织学观察 | 第160-162页 |
| 7.2.9.1 标本处理 | 第160页 |
| 7.2.9.2 H&E染色 | 第160-161页 |
| 7.2.9.3 甲苯胺蓝染色 | 第161页 |
| 7.2.9.4 番红O-固绿染色 | 第161-162页 |
| 7.2.9.5 免疫组织化学染色 | 第162页 |
| 7.2.10 Real-time PCR检测相关基因表达 | 第162-165页 |
| 7.3 结果与讨论 | 第165-176页 |
| 7.3.1 PLGA双层支架的制备 | 第165-166页 |
| 7.3.2 PLGA双层支架的力学性能 | 第166-168页 |
| 7.3.3 PLGA双层支架植入骨/软骨缺损 | 第168-171页 |
| 7.3.4 组织学/免疫组织学检测和评分 | 第171-174页 |
| 7.3.5 相关基因的表达 | 第174-176页 |
| 7.4 本章小结 | 第176-177页 |
| 参考文献 | 第177-185页 |
| 第八章 不同孔径分布双层支架修复兔关节软骨/软骨下骨缺损 | 第185-203页 |
| 8.1 前言 | 第185-186页 |
| 8.2 实验部分 | 第186-189页 |
| 8.2.1 原料与试剂 | 第186-188页 |
| 8.2.2 PLGA双层支架的制备 | 第188页 |
| 8.2.3 动物实验 | 第188-189页 |
| 8.3 结果与讨论 | 第189-200页 |
| 8.3.1 PLGA双层支架的制备 | 第189-191页 |
| 8.3.2 PLGA双层支架植入骨/软骨缺损 | 第191-194页 |
| 8.3.3 骨/软骨缺损修复大体观和断面观察 | 第194-195页 |
| 8.3.4 组织学检查 | 第195-198页 |
| 8.3.5 相关基因的表达 | 第198-200页 |
| 8.4 本章小结 | 第200-201页 |
| 参考文献 | 第201-203页 |
| 第九章 全文总结 | 第203-208页 |
| 9.1 论文的主要工作 | 第203-206页 |
| 9.2 论文工作的主要创新性 | 第206页 |
| 9.3 论文的理论和实际意义 | 第206-207页 |
| 9.4 论文的不足与展望 | 第207-208页 |
| 作者简历 | 第208-213页 |
| 致谢 | 第213-216页 |
