| 摘要 | 第4-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 英文缩略词表 | 第10-14页 |
| 前言 | 第14-18页 |
| 1 材料与方法 | 第18-30页 |
| 1.1 实验动物 | 第18页 |
| 1.1.1 动物饲料和动物造模试剂 | 第18页 |
| 1.2 实验试剂 | 第18-22页 |
| 1.2.1 蛋白检测所用试剂盒 | 第18页 |
| 1.2.2 血液生化分析试剂盒 | 第18-19页 |
| 1.2.3 酶联免疫吸附试验试剂盒（ELISA KIT） | 第19页 |
| 1.2.4 氧化抗氧化检测试剂盒 | 第19-20页 |
| 1.2.5 病理组织切片所用试剂 | 第20-21页 |
| 1.2.6 TUNEL细胞凋亡检测试剂盒 | 第21页 |
| 1.2.7 Western blot试剂和耗材 | 第21页 |
| 1.2.8 一抗和二抗 | 第21-22页 |
| 1.2.9 免疫组化试剂和耗材 | 第22页 |
| 1.3 主要仪器及设备 | 第22-23页 |
| 1.4 主要试剂配制 | 第23-30页 |
| 1.4.1 不同浓度NaHS溶液的配制 | 第23页 |
| 1.4.2 HE染色液体 | 第23-24页 |
| 1.4.3 灌流液和固定液 | 第24页 |
| 1.4.4 Western Blot试剂 | 第24-28页 |
| 1.4.5 免疫组化试剂 | 第28-30页 |
| 2 实验方法与步骤 | 第30-48页 |
| 2.1 小鼠肾脏IRI模型的建立及实验分组 | 第30-32页 |
| 2.2 小鼠血液和肾脏样本的收集与处理 | 第32页 |
| 2.3 小鼠肾功能指标检测 | 第32-34页 |
| 2.3.1 肌氨酸氧化酶法检测小鼠血肌酐（Scr）水平 | 第32-33页 |
| 2.3.2 脲酶法检测小鼠血液中尿素氮（BUN）水平 | 第33页 |
| 2.3.3 ELISA法测定小鼠血液中胱抑素C（Cys-C）水平 | 第33-34页 |
| 2.4 小鼠肾脏组织形态学观察 | 第34-36页 |
| 2.4.1 石蜡组织切片HE染色制作 | 第34-35页 |
| 2.4.2 电镜图片的制作 | 第35-36页 |
| 2.5 小鼠肾脏抗氧化能力检测 | 第36-39页 |
| 2.5.1 采用WST-1 法检测小鼠肾脏组织总超氧化物歧化酶（SOD）活力 | 第36-38页 |
| 2.5.2 采用TBA法测定小鼠肾脏组织丙二醛（MDA）含量 | 第38-39页 |
| 2.6 小鼠肾脏组织抗凋亡水平检测 | 第39-42页 |
| 2.6.1 Western Blot法检测鼠肾脏组织凋亡相关蛋白Bax、Bcl-2 和Caspase-3 的表达水平 | 第39-42页 |
| 2.6.2 一步法TUNEL检测小鼠肾脏细胞凋亡情况 | 第42页 |
| 2.7 小鼠肾脏组织自噬相关蛋白表达水平检测 | 第42-46页 |
| 2.7.1 Western Blot法检测鼠肾脏组织自噬相关蛋白LC3Ⅰ/Ⅱ和Beclin 1 的表达水平 | 第42-45页 |
| 2.7.2 免疫组化法检测鼠肾脏组织自噬相关蛋白P62的表达水平 | 第45-46页 |
| 2.8 统计学处理 | 第46-48页 |
| 3 实验结果 | 第48-58页 |
| 3.1 H_2S预处理可以明显改善由于肾脏IRI导致的肾功能改变 | 第48-49页 |
| 3.2 H_2S预处理后可以明显改善由于肾脏IRI导致的肾脏病变情况 | 第49-51页 |
| 3.3 H_2S预处理后可以明显提高肾脏对氧自由基的清除能力，提高组织内总抗氧化能力 | 第51-52页 |
| 3.4 H_2S预处理后可以明显改善肾脏的细胞凋亡情况 | 第52-53页 |
| 3.5 H_2S预处理后可以明显提高肾脏的自噬水平 | 第53-58页 |
| 3.5.1 H_2S预处理后可以明显改善肾脏组织受损的超微结构 | 第53-55页 |
| 3.5.2 H_2S预处理后可以明显提高肾脏组织自噬相关蛋白LC-3和Beclin-1的表达 | 第55-56页 |
| 3.5.3 H_2S预处理后可以明显降低肾脏组织自噬相关蛋白P62的表达 | 第56-58页 |
| 4 讨论 | 第58-64页 |
| 5 结论 | 第64-66页 |
| 参考文献 | 第66-72页 |
| 致谢 | 第72-74页 |
| 硕士期间发表的学术论文 | 第74-75页 |
