摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
英文缩略语表 | 第10-11页 |
前言 | 第11-13页 |
1.材料与方法 | 第13-39页 |
1.1 主要实验仪器 | 第13-14页 |
1.2 实验材料 | 第14-23页 |
1.2.1 实验对象 | 第14-15页 |
1.2.2 主要实验试剂 | 第15-16页 |
1.2.3 质粒和菌株 | 第16页 |
1.2.4 相关引物合成 | 第16-17页 |
1.2.5 试剂配制 | 第17-23页 |
1.3 实验方法 | 第23-39页 |
1.3.1 THP-1、HEK-293T细胞培养 | 第23-24页 |
1.3.2 提取THP-1 细胞RNA | 第24-25页 |
1.3.3 实时荧光定量PCR检测细胞miR-155 的相对表达水平 | 第25-26页 |
1.3.4 泡沫细胞油红O染色 | 第26-27页 |
1.3.5 报告基因质粒构建 | 第27-31页 |
1.3.6CARHSP1表达质粒的构建 | 第31-32页 |
1.3.7 Luciferase reporter assay验证靶基因 | 第32-33页 |
1.3.8 western blot技术检测不同蛋白表达情况 | 第33-35页 |
1.3.9 染色质免疫共沉淀技术(ChIP)验证NF-κB与miR-155 启动子区结合 | 第35-38页 |
1.3.10 mRNA stability assay验证CARHSP1维持TNF-α mRNA的稳定性 | 第38-39页 |
2.实验结果 | 第39-53页 |
2.1 miR-155 在AS泡沫细胞模型中表达升高 | 第39-41页 |
2.2 miR-155 在AS病人血浆和斑块组织中升高 | 第41-42页 |
2.3 miR-155 在泡沫细胞形成过程中通过抑制TNF-α 的表达来削弱脂质沉积和炎症反应 | 第42-44页 |
2.4 CARHSP1是miR-155 的一个功能性的靶基因 | 第44-49页 |
2.5 CARHSP1能维持TNF-α mRNA的稳定性 | 第49-51页 |
2.6 AS炎症反应过程时,炎症因子TNF-α 活化转录因子NF-κB入核并转录调控miR-155 的表达 | 第51-53页 |
3.实验讨论 | 第53-56页 |
结语 | 第56-57页 |
参考文献 | 第57-60页 |
附录1 综述 | 第60-66页 |
参考文献 | 第64-66页 |
附录2 攻读硕士学位期间的科研论文及学术交流获奖情况 | 第66-67页 |
致谢 | 第67页 |