| 中文摘要 | 第9-11页 |
| 英文摘要 | 第11-12页 |
| 前言 | 第13-16页 |
| 第一部分 缺血缺氧诱导新生鼠PVL模型的构建及脑组织VEGF和Ang1水平变化 | 第16-29页 |
| 一. 材料和仪器 | 第16页 |
| 1.实验动物 | 第16页 |
| 2.仪器设备 | 第16页 |
| 3.试剂 | 第16页 |
| 二. 实验方法 | 第16-18页 |
| 1 缺血缺氧构建PVL小鼠模型 | 第16-17页 |
| 2 qRT-PCR | 第17页 |
| 3 石蜡切片HE染色及免疫组化 | 第17页 |
| 4 统计学分析 | 第17-18页 |
| 三. 结果 | 第18-22页 |
| 1. 小鼠一般情况 | 第18页 |
| 2. qRT-PCR检测脑组织Ang1和VEGF mRNA表达情况 | 第18-19页 |
| 2.1 脑组织Ang1 mRNA表达情况 | 第18页 |
| 2.2 脑组织VEGF mRNA表达情况 | 第18-19页 |
| 3. 脑组织病理 | 第19-20页 |
| 4. 脑组织免疫组化 | 第20-22页 |
| 4.1 脑组织Ang1免疫组化 | 第20页 |
| 4.2 脑组织VEGF免疫组化 | 第20-22页 |
| 四. 讨论 | 第22-24页 |
| 五. 结论 | 第24-25页 |
| 参考文献 | 第25-29页 |
| 第二部分 携带VEGF和Ang1基因的BMSCs对新生鼠PVL模型的干预研究 | 第29-50页 |
| 一. VEGF、Ang1质粒慢病毒包装及BMSCs稳转细胞株建立 | 第30页 |
| 二. 小鼠BMSCs的复苏、传代与冻存 | 第30-32页 |
| （一） BMSCs的复苏 | 第30-31页 |
| （二） 细胞的传代 | 第31页 |
| （三） 细胞的冻存 | 第31-32页 |
| 三. 小鼠BMSCs的复苏、传代培养及转染基因后表达情况 | 第32页 |
| 四. 细胞治疗的动物实验阶段 | 第32-46页 |
| （一） 材料与设备 | 第32-33页 |
| （二） 方法 | 第33-37页 |
| 1. 实验分组和方案 | 第33页 |
| 2. mRNA荧光定量PCR | 第33-37页 |
| 3. 脑组织病理学检查及免疫组化 | 第37页 |
| 4. 统计分析方法 | 第37页 |
| （三）结果 | 第37-43页 |
| 1. 体重增长 | 第37页 |
| 2. HE染色病理学观察 | 第37-38页 |
| 3. 脑组织免疫组化 | 第38-41页 |
| 3.1 VEGF表达情况 | 第39-40页 |
| 3.2 Ang1表达情况 | 第40页 |
| 3.3 MBP表达情况 | 第40-41页 |
| 4. qRT-PCR检测脑组织中VEGF及Ang1 mRNA变化 | 第41-43页 |
| 4.1 脑组织VEGF mRNA水平变化 | 第41-42页 |
| 4.2 脑组织Ang1 mRNA水平变化 | 第42-43页 |
| （四）讨论 | 第43-46页 |
| （五）结论 | 第46页 |
| 参考文献 | 第46-50页 |
| 文献综述 血管神经因子对早产儿脑损伤保护机制的研究进展 | 第50-60页 |
| 参考文献 | 第55-60页 |
| 附录：缩略词表 | 第60-61页 |
| 攻读学位期间发表文章情况 | 第61-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
