| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 1 引言 | 第10-22页 |
| 1.1 概述 | 第10-14页 |
| 1.1.1 香蕉作物概述 | 第10-11页 |
| 1.1.2 基因组概述 | 第11页 |
| 1.1.3 香蕉青果的采后成熟 | 第11-13页 |
| 1.1.4 香蕉的采后保鲜与贮藏 | 第13-14页 |
| 1.2 香蕉果实后熟过程中的乙烯信号途径 | 第14-17页 |
| 1.2.1 乙烯 | 第14-15页 |
| 1.2.2 香蕉果实后熟过程中内源乙烯的生物合成 | 第15-17页 |
| 1.3 香蕉HXK基因家族 | 第17-19页 |
| 1.3.1 细胞内的糖酵解途径 | 第17-18页 |
| 1.3.2 乙烯信号途径 | 第18页 |
| 1.3.3 HXK基因家族研究进展 | 第18-19页 |
| 1.4 研究目的和意义 | 第19-21页 |
| 1.5 技术路线 | 第21-22页 |
| 2 实验材料和方法 | 第22-33页 |
| 2.1 实验材料的处理 | 第22-23页 |
| 2.1.1 实验材料的处理 | 第22-23页 |
| 2.2 实验仪器及主要试剂 | 第23页 |
| 2.2.1 主要仪器 | 第23页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第23页 |
| 2.3 方法与步骤 | 第23-33页 |
| 2.3.1 获取HXK基因家族序列和生物信息学的初步分析 | 第23-24页 |
| 2.3.2 提取香蕉总RNA与质量检测 | 第24-25页 |
| 2.3.3 建立香蕉HXK家族基因的cDNA体系 | 第25-27页 |
| 2.3.4 HXK家族基因引物的设计和效果验证 | 第27-28页 |
| 2.3.5 HXK家族基因在香蕉后熟过程中的表达分析 | 第28-30页 |
| 2.3.6 HXK基因家族成员的酶活力测定 | 第30-31页 |
| 2.3.7 乙烯生成量的跟踪测定 | 第31-33页 |
| 3 结果与分析 | 第33-47页 |
| 3.1 几种处理获得的后熟效果 | 第33-35页 |
| 3.2 香蕉HXK家族基因的生物信息学概略 | 第35-36页 |
| 3.3 香蕉总RNA的提取与反转录合成cDNA | 第36-37页 |
| 3.4 香蕉HXK基因家族的引物设计与验证 | 第37-39页 |
| 3.5 HXK基因家族在香蕉果实后熟过程中的表达分析 | 第39-43页 |
| 3.5.1 HXK基因家族在香蕉自然后熟过程中的表达分析 | 第39-40页 |
| 3.5.2 香蕉果实采后成熟进程中不同处理对HXK基因家族成员的表达的影响 | 第40-43页 |
| 3.6 香蕉果实在后熟过程中HXK酶活力分析 | 第43-45页 |
| 3.7 在香蕉的后熟过程中乙烯产量检测分析 | 第45-47页 |
| 4 讨论 | 第47-52页 |
| 4.1 HXK基因家族香蕉果实在自然成熟过程中的表达特异性 | 第47-48页 |
| 4.2 香蕉果实中的HXK家族基因与乙烯合成/乙烯信号途径 | 第48-51页 |
| 4.3 HXK基因的研究前景及展望 | 第51-52页 |
| 5 结论 | 第52-54页 |
| 参考文献 | 第54-58页 |
| 缩略语表 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59页 |
