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低强度脉冲超声协同运动促进骨骼肌肥大的效果及其分子机制研究

摘要第3-6页
Abstract第6-9页
缩略词表第10-14页
1 研究背景及选题依据第14-28页
    1.1 低强度脉冲超声概述第14-17页
        1.1.1 超声波的起源及应用第14页
        1.1.2 超声波的产生及物理特性第14页
        1.1.3 超声波的生物学效应第14-15页
        1.1.4 超声波在医学上的应用第15页
        1.1.5 低强度脉冲超声在骨、骨骼肌上的应用第15-17页
    1.2 运动性骨骼肌肥大概述第17-21页
        1.2.1 骨骼肌的组织学结构第17-18页
        1.2.2 骨骼肌的功能第18-19页
        1.2.3 运动诱导骨骼肌肥大第19页
        1.2.4 构建骨骼肌肥大模型第19-20页
        1.2.5 骨骼肌再生第20-21页
    1.3 细胞概述第21-23页
        1.3.1 成肌细胞的来源及应用第21页
        1.3.2 成肌细胞研究进展第21-23页
    1.4 骨骼肌肥大机制的探究及相关信号转导途径第23-26页
        1.4.1 Myostatin及其受体第23-24页
        1.4.2 Akt及其下游信号通路第24-26页
    1.5 选题依据第26-27页
    1.6 实验技术路线第27-28页
2 实验材料第28-36页
    2.1 实验动物及指标第28-31页
        2.1.1 实验动物及分组第28页
        2.1.2 运动方案干预方式第28-29页
        2.1.3 体重以及抓力测试第29-30页
        2.1.4 组织的采集第30-31页
    2.2 实验动物仪器与试剂第31-33页
        2.2.1 主要仪器第31-32页
        2.2.2 主要试剂第32-33页
    2.3 成肌细胞和细胞培养第33-35页
        2.3.1 成肌细胞第33页
        2.3.2 细胞传代与冻存第33-35页
    2.4 实验细胞仪器与试剂第35-36页
3 实验方法第36-44页
    3.1 动物实验测试方法第36-41页
        3.1.1 肌肉匀浆液的制备第36页
        3.1.2 H&E (Hematoxylin-eosin)染色第36-37页
        3.1.3 Western Blot第37-38页
        3.1.4 RT-qPCR第38-41页
    3.2 成肌细胞实验方法及检测第41-43页
        3.2.1 低强度脉冲超声干预成肌细胞增殖第41页
        3.2.2 低强度脉冲超声干预成肌细胞分化第41-43页
    3.3 数据采集及统计学处理第43-44页
4 实验结果第44-54页
    4.1 体重、抓力及各组腓肠肌湿重第44页
    4.2 生物化学指标第44-45页
    4.3 形态学指标第45-46页
    4.4 低强度脉冲超声协同运动对大鼠骨骼肌蛋白及基因的变化的影响第46-50页
        4.4.1 大鼠腓肠肌MSTN及其受体ActRIIB的基因和蛋白表达第46-48页
        4.4.2 大鼠腓肠肌Akt mRNA、Akt及其磷酸化的表达结果第48-49页
        4.4.3 大鼠腓肠肌mTOR mRNA、mTOR及其磷酸化的表达结果第49页
        4.4.4 大鼠腓肠肌FoxO1 mRNA、FoxO1及其磷酸化的表达结果第49-50页
    4.5 低强度脉冲超声干预对成肌细胞增殖影响的结果第50-51页
    4.6 低强度脉冲超声干预对成肌细胞分化影响的结果第51-54页
5 分析讨论第54-60页
    5.1 低强度脉冲超声协同运动促进骨骼肌肥大的模型评价第54页
    5.2 低强度脉冲超声协同运动对大鼠体重、抓力及腓肠肌等指标干预结果的分析第54-55页
    5.3 低强度脉冲超声协同运动对大鼠腓肠肌能量代谢酶活性的影响第55-56页
    5.4 低强度脉冲超声协同运动对大鼠腓肠肌MSTN/Akt/mTOR & FoxO1信号途径的改善与分析第56-58页
    5.5 低强度脉冲超声干预对成肌细胞增殖分化的影响第58-60页
6 总结与展望第60-62页
参考文献第62-74页
致谢第74-76页
攻读硕士学位期间科研成果第76页

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