摘要 | 第3-6页 |
Abstract | 第6-9页 |
缩略词表 | 第10-14页 |
1 研究背景及选题依据 | 第14-28页 |
1.1 低强度脉冲超声概述 | 第14-17页 |
1.1.1 超声波的起源及应用 | 第14页 |
1.1.2 超声波的产生及物理特性 | 第14页 |
1.1.3 超声波的生物学效应 | 第14-15页 |
1.1.4 超声波在医学上的应用 | 第15页 |
1.1.5 低强度脉冲超声在骨、骨骼肌上的应用 | 第15-17页 |
1.2 运动性骨骼肌肥大概述 | 第17-21页 |
1.2.1 骨骼肌的组织学结构 | 第17-18页 |
1.2.2 骨骼肌的功能 | 第18-19页 |
1.2.3 运动诱导骨骼肌肥大 | 第19页 |
1.2.4 构建骨骼肌肥大模型 | 第19-20页 |
1.2.5 骨骼肌再生 | 第20-21页 |
1.3 细胞概述 | 第21-23页 |
1.3.1 成肌细胞的来源及应用 | 第21页 |
1.3.2 成肌细胞研究进展 | 第21-23页 |
1.4 骨骼肌肥大机制的探究及相关信号转导途径 | 第23-26页 |
1.4.1 Myostatin及其受体 | 第23-24页 |
1.4.2 Akt及其下游信号通路 | 第24-26页 |
1.5 选题依据 | 第26-27页 |
1.6 实验技术路线 | 第27-28页 |
2 实验材料 | 第28-36页 |
2.1 实验动物及指标 | 第28-31页 |
2.1.1 实验动物及分组 | 第28页 |
2.1.2 运动方案干预方式 | 第28-29页 |
2.1.3 体重以及抓力测试 | 第29-30页 |
2.1.4 组织的采集 | 第30-31页 |
2.2 实验动物仪器与试剂 | 第31-33页 |
2.2.1 主要仪器 | 第31-32页 |
2.2.2 主要试剂 | 第32-33页 |
2.3 成肌细胞和细胞培养 | 第33-35页 |
2.3.1 成肌细胞 | 第33页 |
2.3.2 细胞传代与冻存 | 第33-35页 |
2.4 实验细胞仪器与试剂 | 第35-36页 |
3 实验方法 | 第36-44页 |
3.1 动物实验测试方法 | 第36-41页 |
3.1.1 肌肉匀浆液的制备 | 第36页 |
3.1.2 H&E (Hematoxylin-eosin)染色 | 第36-37页 |
3.1.3 Western Blot | 第37-38页 |
3.1.4 RT-qPCR | 第38-41页 |
3.2 成肌细胞实验方法及检测 | 第41-43页 |
3.2.1 低强度脉冲超声干预成肌细胞增殖 | 第41页 |
3.2.2 低强度脉冲超声干预成肌细胞分化 | 第41-43页 |
3.3 数据采集及统计学处理 | 第43-44页 |
4 实验结果 | 第44-54页 |
4.1 体重、抓力及各组腓肠肌湿重 | 第44页 |
4.2 生物化学指标 | 第44-45页 |
4.3 形态学指标 | 第45-46页 |
4.4 低强度脉冲超声协同运动对大鼠骨骼肌蛋白及基因的变化的影响 | 第46-50页 |
4.4.1 大鼠腓肠肌MSTN及其受体ActRIIB的基因和蛋白表达 | 第46-48页 |
4.4.2 大鼠腓肠肌Akt mRNA、Akt及其磷酸化的表达结果 | 第48-49页 |
4.4.3 大鼠腓肠肌mTOR mRNA、mTOR及其磷酸化的表达结果 | 第49页 |
4.4.4 大鼠腓肠肌FoxO1 mRNA、FoxO1及其磷酸化的表达结果 | 第49-50页 |
4.5 低强度脉冲超声干预对成肌细胞增殖影响的结果 | 第50-51页 |
4.6 低强度脉冲超声干预对成肌细胞分化影响的结果 | 第51-54页 |
5 分析讨论 | 第54-60页 |
5.1 低强度脉冲超声协同运动促进骨骼肌肥大的模型评价 | 第54页 |
5.2 低强度脉冲超声协同运动对大鼠体重、抓力及腓肠肌等指标干预结果的分析 | 第54-55页 |
5.3 低强度脉冲超声协同运动对大鼠腓肠肌能量代谢酶活性的影响 | 第55-56页 |
5.4 低强度脉冲超声协同运动对大鼠腓肠肌MSTN/Akt/mTOR & FoxO1信号途径的改善与分析 | 第56-58页 |
5.5 低强度脉冲超声干预对成肌细胞增殖分化的影响 | 第58-60页 |
6 总结与展望 | 第60-62页 |
参考文献 | 第62-74页 |
致谢 | 第74-76页 |
攻读硕士学位期间科研成果 | 第76页 |