| 致谢 | 第7-11页 |
| 缩写词 | 第11-14页 |
| 摘要 | 第14-16页 |
| Abstract | 第16-17页 |
| 前言 | 第18-20页 |
| 1 文献综述 | 第20-32页 |
| 1.1 植物雄配子发育 | 第20-26页 |
| 1.1.1 影响花粉发育的雄配子突变体 | 第21-22页 |
| 1.1.2 影响配子体细胞分化的突变体 | 第22页 |
| 1.1.3 小孢子不均等分裂相关基因 | 第22-23页 |
| 1.1.4 控制雄配子发育的基因 | 第23-24页 |
| 1.1.5 花粉发育的转录组研究 | 第24页 |
| 1.1.6 两个全局性的雄配子基因表达方案 | 第24-25页 |
| 1.1.7 转录后调控 | 第25页 |
| 1.1.8 遗传学和转录组信息的整合 | 第25-26页 |
| 1.2 被子植物授粉受精 | 第26页 |
| 1.3 植物质膜H~+ATPase | 第26-32页 |
| 1.3.1 植物质膜H~+-ATPase的结构特征 | 第27页 |
| 1.3.2 植物质膜H~--ATPase的分子作用机制 | 第27-28页 |
| 1.3.3 植物质膜H~--ATPase的功能研究 | 第28-29页 |
| 1.3.4 植物质膜H~--ATPase家族成员研究 | 第29-32页 |
| 2 白菜花粉发育与授粉受精相关基因BcAHA8的克隆及序列分析 | 第32-42页 |
| 2.1 材料与方法 | 第32-35页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第32页 |
| 2.1.2 基因组DNA提取 | 第32-33页 |
| 2.1.3 总RNA的提取及cDNA的合成 | 第33-34页 |
| 2.1.4 cDNA和DNA全长序列的扩增 | 第34-35页 |
| 2.1.5 基因序列分析 | 第35页 |
| 2.2 结果 | 第35-39页 |
| 2.2.1 目的基因cDNA全长的获得 | 第35-36页 |
| 2.2.2 目的基因DNA扩增 | 第36-37页 |
| 2.2.3 BcAHA8核苷酸及氨基酸序列分析 | 第37-39页 |
| 2.3 讨论 | 第39-42页 |
| 3 白菜‘Bcajh 97-01A/B’的BcAHA8 时空表达模式分析 | 第42-54页 |
| 3.1 材料与方法 | 第42-49页 |
| 3.1.1 半定量RT-PCR分析 | 第42-43页 |
| 3.1.2 qRT-PCR分析 | 第43-44页 |
| 3.1.3 原位杂交分析 | 第44-49页 |
| 3.2 结果 | 第49页 |
| 3.2.1 BcAHA8基因在白菜花粉发育及授粉受精中持续表达 | 第49页 |
| 3.2.2 BcAHA8在成熟花粉和授粉后雌蕊中特异表达 | 第49页 |
| 3.3 讨论 | 第49-54页 |
| 3.3.1 BcAHA8是一个花粉晚期表达基因 | 第49-50页 |
| 3.3.2 BcAHA8可能参与授粉受精过程 | 第50-54页 |
| 4 花粉发育与授粉受精相关的抗坏血酸氧化酶基因BcSKSU的功能研究 | 第54-62页 |
| 4.1 材料与方法 | 第55-58页 |
| 4.1.1 BcSKS11反义RNA载体的构建 | 第55-56页 |
| 4.1.2 反义BcSKS11表达载体对菜心的遗传转化 | 第56-57页 |
| 4.1.3 转基因植株的分子检测 | 第57-58页 |
| 4.2 结果与分析 | 第58-59页 |
| 4.2.1 BcSKS11反义RNA载体的构建 | 第58-59页 |
| 4.2.2 获得转反义BcSKS11菜心植株 | 第59页 |
| 4.2.3 PCR检测初步证明反义表达载体成功转入菜心植株 | 第59页 |
| 4.3 讨论 | 第59-62页 |
| 结论 | 第62-64页 |
| 参考文献 | 第64-72页 |
| 硕士期间发表的文章 | 第72页 |
