| 摘要 | 第10-11页 |
| Abstract | 第11页 |
| 第1章 引言 | 第12-20页 |
| 1.1 先天性免疫系统 | 第12页 |
| 1.2 想的实验模型-昆虫 | 第12-13页 |
| 1.3 酚氧化酶原激活系统(pro-phenoloxidase activation system) | 第13-17页 |
| 1.3.1 模式识别作用 | 第13-15页 |
| 1.3.2 丝氨酸蛋白酶(Serine protease,Sp) | 第15页 |
| 1.3.3 酚氧化酶原及其激活 | 第15-17页 |
| 1.4 酚氧化酶原激活系统的免疫学作用 | 第17页 |
| 1.4.1 在昆虫黑化反应中的作用 | 第17页 |
| 1.4.2 参与昆虫凝血过程等其它免疫学功能 | 第17页 |
| 1.5 实验昆虫-大黄粉虫 | 第17-18页 |
| 1.6 立题依据 | 第18-20页 |
| 第2章 实验材料与仪器 | 第20-22页 |
| 2.1 实验动物 | 第20页 |
| 2.2 实验菌株 | 第20页 |
| 2.3 实验试剂 | 第20-21页 |
| 2.4 实验仪器 | 第21-22页 |
| 第3章 实验方法 | 第22-27页 |
| 3.1 黄粉虫血淋巴的收集 | 第22页 |
| 3.2 黄粉虫体内酚氧化酶原活力的观察 | 第22页 |
| 3.3 体外酚氧化酶原激活及活力测定条件的初步摸索 | 第22-23页 |
| 3.4 肽聚糖(PGN)和脂多糖(LPS)标准品对体外酚氧化酶原激活程度的影响 | 第23-24页 |
| 3.4.1 肽聚糖对体外酚氧化酶原的激活程度 | 第23页 |
| 3.4.2 脂多糖标准品对体外酚氧化酶原的激活程度 | 第23-24页 |
| 3.5 细菌对体外酚氧化酶原激活系统的激活情况 | 第24-27页 |
| 3.5.1 菌株的培养和保存 | 第24页 |
| 3.5.2 完整菌株对体外酚氧化酶原的激活情况 | 第24页 |
| 3.5.3 筛选合适的菌株处理方法 | 第24-26页 |
| 3.5.4 基于黄粉虫的细菌检测方法的实用性验证 | 第26-27页 |
| 第4章 实验结果 | 第27-40页 |
| 4.1 细菌对黄粉虫体内酚氧化酶原激活系统的影响 | 第27页 |
| 4.2 体外酚氧化酶原激活及活力测定条件的初步摸索 | 第27-30页 |
| 4.3 PGN和LPS标准品对体外酚氧化酶原的激活情况 | 第30-31页 |
| 4.3.1 PGN对体外酚氧化酶原的激活情况 | 第30页 |
| 4.3.2 LPS标准品对体外酚氧化酶原的激活情况 | 第30-31页 |
| 4.4 完整菌株对体外酚氧化酶原的激活情况 | 第31-32页 |
| 4.5 筛选合适的菌株处理方法 | 第32-36页 |
| 4.5.1 物理学方法处理后菌株对酚氧化酶原系统的激活情况 | 第32-33页 |
| 4.5.2 生物学方法处理后菌株对酚氧化酶原系统的激活情况 | 第33-34页 |
| 4.5.3 化学方法处理后菌株对酚氧化酶原系统的激活情况 | 第34-36页 |
| 4.6 基于黄粉虫的细菌检测方法的实用性验证 | 第36-40页 |
| 4.6.1 实验菌株的最低检测浓度 | 第36-37页 |
| 4.6.2 待检测菌株范围的分析 | 第37-40页 |
| 第5章 讨论 | 第40-43页 |
| 5.1 血淋巴样品的稳定性 | 第40页 |
| 5.2 体内活菌注射对黄粉虫酚氧化酶原激活系统的影响 | 第40页 |
| 5.3 体外酚氧化酶原激活及活力测定条件的摸索 | 第40页 |
| 5.4 PGN和LPS诱导血淋巴酚氧化酶原激活系统的情况 | 第40-41页 |
| 5.5 菌株处理方法的摸索和体外酚氧化酶酶激活及活力测定 | 第41页 |
| 5.6 实验菌株最低检测浓度的摸索 | 第41-42页 |
| 5.7 细菌对体外酚氧化酶原激活系统的激活情况 | 第42页 |
| 5.8 前景展望 | 第42-43页 |
| 第6章 结论 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-46页 |
| 致谢 | 第46页 |
