| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 1. 绪论 | 第10-19页 |
| 1.1 研究背景 | 第10-12页 |
| 1.2 传统的微生物检测方法—细菌总数 | 第12-13页 |
| 1.3 异养菌平板计数（HPC） | 第13-14页 |
| 1.4 微生物分子生态学技术 | 第14-17页 |
| 1.4.1 聚合酶链反应（PCR）技术 | 第15-16页 |
| 1.4.2 通过分析rDNA 序列来鉴定环境中的微生物－分子克隆文库 | 第16-17页 |
| 1.5 研究目的、内容和意义 | 第17-19页 |
| 2. 水的深度处理生物安全性研究 | 第19-24页 |
| 2.1 HPC 检测材料和方法 | 第19-20页 |
| 2.1.1 HPC 培养基—R2A 培养基 | 第19页 |
| 2.1.2 HPC 培养条件 | 第19页 |
| 2.1.3 HPC-R2A 计数操作步骤 | 第19-20页 |
| 2.1.4 菌落的观察及计数 | 第20页 |
| 2.2 活性炭中微生物分子克隆文库研究 | 第20-22页 |
| 2.2.1 活性炭中总DNA 提取 | 第20页 |
| 2.2.2 16S rDNA 基因全长的PCR 扩增 | 第20页 |
| 2.2.3 16S rDNA 基因文库的构建 | 第20-22页 |
| 2.2.4 基因文库的ARDRA 分型 | 第22页 |
| 2.2.5 序列测定和系统发育分析 | 第22页 |
| 2.3 实验所用的主要仪器及药品 | 第22-24页 |
| 2.3.1 实验所需仪器 | 第22-23页 |
| 2.3.2 实验所需药品 | 第23-24页 |
| 3. 水的深度处理生物安全性实验结果 | 第24-53页 |
| 3.1 HPC 检测结果 | 第24-33页 |
| 3.1.1 甲水厂HPC 检测结果 | 第24-29页 |
| 3.1.2 乙水厂HPC 检测结果 | 第29-32页 |
| 3.1.3 小结 | 第32-33页 |
| 3.2 分子克隆文库研究结果 | 第33-53页 |
| 3.2.1 甲水厂活性炭研究结果 | 第33-41页 |
| 3.2.2 乙水厂1 | 第41-46页 |
| 3.2.3 乙水厂6 | 第46-51页 |
| 3.2.4 分子生态学研究结论 | 第51-53页 |
| 4. 自养反硝化研究 | 第53-68页 |
| 4.1 自养反硝化研究实验方法 | 第53-55页 |
| 4.1.1 自养反硝化污泥浓度的测定 | 第53页 |
| 4.1.2 硝酸盐氮的测定 | 第53-54页 |
| 4.1.3 硫酸根的测定 | 第54-55页 |
| 4.2 自养反硝化研究结果与讨论 | 第55-58页 |
| 4.2.1 自养反硝化污泥的生长曲线 | 第55页 |
| 4.2.2 硝酸盐氮标准曲线的绘制 | 第55-56页 |
| 4.2.3 硝酸盐氮随时间的变化规律 | 第56-58页 |
| 4.3 硫酸盐生成曲线 | 第58-59页 |
| 4.4 纯菌自养反硝化研究 | 第59-60页 |
| 4.4.1 微生物的来源 | 第59页 |
| 4.4.2 菌种分离与纯化 | 第59页 |
| 4.4.3 影响因素及其动力学试验 | 第59-60页 |
| 4.4.4 硝酸盐的测定 | 第60页 |
| 4.5 纯菌自养反硝化研究结果与讨论 | 第60-62页 |
| 4.5.1 菌种分离 | 第60-61页 |
| 4.5.2 优势菌株的筛选 | 第61-62页 |
| 4.6 PH 对优势菌种N-I 的影响 | 第62-63页 |
| 4.6.1 菌株N-I 在不同pH 下自养反硝化效果 | 第62-63页 |
| 4.6.2 菌株N-I 在不同pH 下硝酸盐的降解动力学 | 第63页 |
| 4.7 温度对优势菌株N-I 的影响 | 第63-66页 |
| 4.7.1 菌株N-I 在不同温度下硝酸盐随时间的变化 | 第63-64页 |
| 4.7.2 菌株N-I 在不同温度下硝酸盐的降解动力学 | 第64-65页 |
| 4.7.3 反应的活化能Ea | 第65-66页 |
| 4.8 碳酸氢根离子对优势菌株N-I 的影响 | 第66-68页 |
| 4.8.1 菌株N-I 在不同浓度碳酸氢根离子下自养反硝化情况 | 第66页 |
| 4.8.2 菌株N-I 在不同浓度碳酸氢根下硝酸盐的降解动力学 | 第66-68页 |
| 5. 结论及建议 | 第68-70页 |
| 5.1 结论 | 第68-69页 |
| 5.2 建议 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70-73页 |
| 参考文献 | 第73-76页 |
| 附录 | 第76页 |
