| 摘要 | 第12-15页 |
| ABSTRACT | 第15-18页 |
| 符号说明 | 第19-20页 |
| 第一章 前言 | 第20-28页 |
| 1 类风湿性关节炎发病机制 | 第21-25页 |
| 1.1 RA发病机制的自身免疫反应过程 | 第21-22页 |
| 1.2 IL-1与RA的关系 | 第22-24页 |
| 1.3 TNF-α与RA的关系 | 第24-25页 |
| 1.4 PGE_2与RA的关系 | 第25页 |
| 2 鲨鱼软骨多糖与RA | 第25-26页 |
| 3 鲨鱼软骨多糖与肿瘤 | 第26-27页 |
| 4 本课题拟解决的问题 | 第27-28页 |
| 第二章 SCS和SSCS的制备 | 第28-33页 |
| 1 材料与仪器 | 第28页 |
| 1.1 材料与试剂 | 第28页 |
| 1.2 仪器 | 第28页 |
| 2 方法 | 第28-30页 |
| 2.1 SCS的提取 | 第28-29页 |
| 2.2 SCS的纯化 | 第29页 |
| 2.3 SSCS的制备 | 第29-30页 |
| 2.4 SCS与SSCS的理化性质 | 第30页 |
| 3 结果 | 第30-31页 |
| 3.1 SCS与SSCS的UV扫描图谱 | 第30-31页 |
| 3.2 SCS含量测定 | 第31页 |
| 3.3 SCS与SSCS的SO4~(2-)/COO~-比值测定 | 第31页 |
| 3.4 糖醛酸的含量测定 | 第31页 |
| 4 讨论 | 第31-33页 |
| 4.1 SCS的提取 | 第31-32页 |
| 4.2 SCS的纯化 | 第32页 |
| 4.3 SSCS的制备 | 第32页 |
| 4.4 SCS与SSCS的理化性质 | 第32-33页 |
| 第三章 SCS和SSCS的结构研究 | 第33-39页 |
| 1 材料与仪器 | 第33页 |
| 1.1 材料 | 第33页 |
| 1.2 仪器 | 第33页 |
| 2 方法 | 第33页 |
| 2.1 紫外光谱扫描 | 第33页 |
| 2.2 红外光谱扫描 | 第33页 |
| 2.3 质谱测定 | 第33页 |
| 2.4 核磁共振光谱测定 | 第33页 |
| 3 结果 | 第33-37页 |
| 3.1 SCS与SSCS的紫外扫描光谱 | 第33-34页 |
| 3.2 SCS与SSCS的红外扫描光谱 | 第34-35页 |
| 3.3 SCS与SSCS的质谱测定 | 第35-36页 |
| 3.4 SCS与SSCS的核磁共振光谱测定 | 第36-37页 |
| 4 讨论 | 第37-39页 |
| 第四章 SCS和SSCS对大鼠原发佐剂性关节炎的影响 | 第39-42页 |
| 1 材料与仪器 | 第39页 |
| 1.1 材料与试剂 | 第39页 |
| 1.2 仪器 | 第39页 |
| 1.3 动物 | 第39页 |
| 2 方法 | 第39-40页 |
| 2.1 致炎 | 第39页 |
| 2.2 药物的配制 | 第39页 |
| 2.3 分组与给药方案 | 第39页 |
| 2.4 观察指标 | 第39-40页 |
| 3 结果 | 第40页 |
| 4 讨论 | 第40-42页 |
| 第五章 SCS和SSCS对大鼠佐剂性关节炎预防作用的影响 | 第42-48页 |
| 1 材料与仪器 | 第42页 |
| 1.1 材料与试剂 | 第42页 |
| 1.2 仪器 | 第42页 |
| 1.3 动物 | 第42页 |
| 2 方法 | 第42-43页 |
| 2.1 致炎 | 第42页 |
| 2.2 药物的配制 | 第42页 |
| 2.3 分组与给药方案 | 第42页 |
| 2.4 观察指标 | 第42-43页 |
| 3 结果 | 第43-45页 |
| 3.1 一般情况 | 第43页 |
| 3.2 SCS和SSCS对大鼠佐剂性关节炎足肿胀度的影响 | 第43-45页 |
| 3.3 SCS和SSCS对大鼠佐剂性关节炎指数的影响 | 第45页 |
| 4 讨论 | 第45-48页 |
| 4.1 SCS和SSCS对大鼠佐剂性关节炎足肿胀度的影响 | 第45-46页 |
| 4.2 SCS和SSCS对大鼠佐剂性关节炎指数的影响 | 第46-48页 |
| 第六章 SCS和SSCS对大鼠佐剂继发性关节炎治疗作用的影响 | 第48-58页 |
| 1 材料与仪器 | 第48页 |
| 1.1 材料与试剂 | 第48页 |
| 1.2 仪器 | 第48页 |
| 1.3 动物 | 第48页 |
| 2 方法 | 第48-49页 |
| 2.1 致炎 | 第48页 |
| 2.2 药物的配制 | 第48页 |
| 2.3 分组与给药方案 | 第48页 |
| 2.4 对大鼠佐剂性关节炎脾脏和胸腺系数的影响 | 第48-49页 |
| 2.5 对大鼠佐剂性关节炎模型滑膜病理的影响 | 第49页 |
| 2.6 观察指标 | 第49页 |
| 3 结果 | 第49-55页 |
| 3.1 一般情况 | 第49-50页 |
| 3.2 SCS和SSCS对大鼠佐剂性关节炎足肿胀度的影响 | 第50-51页 |
| 3.3 SCS和SSCS对大鼠佐剂性关节炎脾脏和胸腺的影响 | 第51-52页 |
| 3.4 SCS和SSCS对大鼠佐剂性关节炎指数的影响 | 第52-53页 |
| 3.5 SCS和SSCS对大鼠佐剂性关节炎模型滑膜病理的影响 | 第53-55页 |
| 4 讨论 | 第55-58页 |
| 4.1 SCS和SSCS对大鼠佐剂性关节炎足肿胀度的影响 | 第55-56页 |
| 4.2 SCS和SSCS对大鼠佐剂性关节炎脾脏和胸腺的影响 | 第56页 |
| 4.3 SCS和SSCS对大鼠佐剂性关节炎指数的影响 | 第56页 |
| 4.4 SCS和SSCS对大鼠佐剂性关节炎模型滑膜病理的影响 | 第56-58页 |
| 第七章 SCS和SSCS对大鼠佐剂性关节炎血清IL-1、TNF-α和PGE_2的影响 | 第58-62页 |
| 1 材料与仪器 | 第58页 |
| 1.1 材料与试剂 | 第58页 |
| 1.2 仪器 | 第58页 |
| 1.3 动物 | 第58页 |
| 2 方法 | 第58-59页 |
| 2.1 致炎 | 第58页 |
| 2.2 药物的配制 | 第58页 |
| 2.3 分组与给药方案 | 第58-59页 |
| 2.4 SCS和SSCS对大鼠佐剂性关节炎血清血细胞因子1L-1、TNF-α和PGE_2的影响 | 第59页 |
| 3 结果 | 第59-61页 |
| 4 讨论 | 第61-62页 |
| 第八章 SCS和SSCS对S_(180)和肝癌实体瘤的抑制作用 | 第62-67页 |
| 1 材料与试剂 | 第62页 |
| 1.1 材料与试剂 | 第62页 |
| 1.2 仪器 | 第62页 |
| 1.3 动物 | 第62页 |
| 1.4 瘤源小鼠 | 第62页 |
| 2 方法 | 第62-63页 |
| 2.1 肿瘤悬液的制备 | 第62页 |
| 2.2 药物的配制 | 第62页 |
| 2.3 分组与给药 | 第62-63页 |
| 2.4 计算抑制率 | 第63页 |
| 3 结果 | 第63-64页 |
| 3.1 SCS和SSCS对小鼠S_(180)实体瘤的影响 | 第63-64页 |
| 3.2 SCS和SSCS对小鼠肝癌实体瘤的影响 | 第64页 |
| 4 讨论 | 第64-67页 |
| 总结 | 第67-69页 |
| 附录 | 第69-83页 |
| 参考文献 | 第83-89页 |
| 致谢 | 第89-90页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第90-91页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第91页 |
