中文摘要 | 第6-10页 |
Abstract | 第10-13页 |
英文缩略字表 | 第14-16页 |
前言 | 第16-20页 |
第一部分 帕金森病患者血清瘦素及其受体,以及氧化应激的变化 | 第20-29页 |
1 实验材料 | 第20页 |
1.1 血样 | 第20页 |
1.2 主要试剂和仪器 | 第20页 |
2 | 第20-23页 |
2.1 帕金森病患者及对照组血清中的瘦素及其受体、MDA、SOD 以及 GSH 的检测 | 第20-22页 |
2.2 不同年龄段人群的瘦素及其受体、MDA、SOD 以及 GSH 的检测 | 第22页 |
2.3 统计学处理 | 第22-23页 |
3 结果 | 第23-26页 |
3.1 不同年龄组中的瘦素及其受体的变化 | 第23页 |
3.2 帕金森病患者瘦素及其受体、MDA、SOD 以及 GSH 的变化 | 第23-24页 |
3.3 性别对帕金森病患者瘦素及其受体、MDA、SOD 以及 GSH 的影响 | 第24-26页 |
4 讨论 | 第26-29页 |
第二部分 瘦素对帕金森病动物模型黑质区域的保护 | 第29-36页 |
1 实验材料 | 第29-30页 |
1.1 实验动物 | 第29页 |
1.2 实验仪器 | 第29页 |
1.3 实验试剂: | 第29页 |
1.4 主要试剂配制 | 第29-30页 |
2 实验方法 | 第30-32页 |
2.1 帕金森小鼠动物模型的建立 | 第30-31页 |
2.2 帕金森动物模型建立成功的判断 | 第31页 |
2.3 统计学处理 | 第31-32页 |
3 结果 | 第32-34页 |
3.1 瘦素缓解了 6-OHDA 诱导的帕金森病模型的症状 | 第32-33页 |
3.2 瘦素提高了 6-OHDA 诱导的帕金森病小鼠的抗氧化水平 | 第33-34页 |
4 讨论 | 第34-36页 |
4.1 模型的建立和瘦素的保护 | 第34页 |
4.2 瘦素提高了模型鼠的抗氧化水平 | 第34-36页 |
第三部分 瘦素减轻 6-羟基多巴胺和鱼藤酮诱导的 SH-SY5Y 细胞损伤的机制研究 | 第36-67页 |
1 实验材料 | 第36-39页 |
1.1 细胞系 | 第36页 |
1.2 主要试剂 | 第36-37页 |
1.3 主要设备和仪器 | 第37页 |
1.4 试剂配制 | 第37-39页 |
2 方法 | 第39-46页 |
2.1 细胞培养 | 第39-40页 |
2.2 实验分组 | 第40-41页 |
2.3 细胞相关代谢检测 | 第41页 |
2.4 台盼蓝检测细胞的死亡率 | 第41-42页 |
2.5 流式细胞术检测 SH-SY5Y 细胞凋亡率 | 第42页 |
2.6 活性氧检测 | 第42页 |
2.7 ATP 检测 | 第42-43页 |
2.8 Western Blot 法检测信号分子和下游蛋白 | 第43-45页 |
2.9 RT-PCR 检测 | 第45-46页 |
2.10 细胞的免疫荧光 | 第46页 |
2.11 统计学处理 | 第46页 |
3 结果 | 第46-62页 |
3.1 6-OHDA 和鱼藤酮诱导的 SH-SY5Y 损伤的帕金森病细胞模型的建立 | 第46-48页 |
3.2 瘦素减轻帕金森病细胞模型的损伤 | 第48-50页 |
3.3 Nanobody 阻断了瘦素对于帕金森病细胞模型损伤的保护 | 第50-53页 |
3.4 相关阻断剂对瘦素保护 SH-SY5Y 的影响 | 第53-55页 |
3.5 瘦素减轻帕金森病细胞模型损伤的机制 | 第55-61页 |
3.6 瘦素对鱼藤酮诱导的α-synuclein 的影响 | 第61-62页 |
4 讨论 | 第62-67页 |
4.1 帕金森病细胞模型的建立 | 第62-63页 |
4.2 瘦素相关信号通路的保护作用 | 第63页 |
4.3 帕金森病与凋亡的关系 | 第63-64页 |
4.4 Leptin 能够减轻 6-OHDA 和鱼藤酮诱导的 SH-SY5Y 细胞的损伤 | 第64页 |
4.5 瘦素降低了 6-OHDA 和鱼藤酮诱导的 SH-SY5Y 细胞的氧化应激水平 | 第64-65页 |
4.6 瘦素保护的通路研究 | 第65-66页 |
4.7 瘦素对于帕金森病相关蛋白α-synuclein 的影响 | 第66-67页 |
主要结论 | 第67-68页 |
参考文献 | 第68-74页 |
文献综述 | 第74-82页 |
参考文献 | 第79-82页 |
攻读学位期间发表文章情况 | 第82-83页 |
致谢 | 第83-84页 |