| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第10-11页 |
| 前言 | 第11-15页 |
| 研究现状、成果 | 第11-13页 |
| 研究目的、方法 | 第13-15页 |
| 一、牛视网膜微血管周细胞的培养及鉴定 | 第15-22页 |
| 1.1 材料与方法 | 第15-16页 |
| 1.1.1 组织来源 | 第15页 |
| 1.1.2 主要仪器设备 | 第15-16页 |
| 1.1.3 主要试剂 | 第16页 |
| 1.1.4 实验主要试剂的配置 | 第16页 |
| 1.2 实验方法 | 第16-19页 |
| 1.2.1 牛视网膜毛细血管周细胞原代培养及鉴定 | 第16-18页 |
| 1.2.2 周细胞计数 | 第18页 |
| 1.2.3 周细胞传代培养 | 第18-19页 |
| 1.3 实验结果 | 第19-21页 |
| 1.3.1 细胞形态学观察 | 第19-20页 |
| 1.3.2 原代牛视网膜微血管周细胞鉴定 | 第20-21页 |
| 1.4 小结 | 第21-22页 |
| 二、高糖经p38 MAPK调节BRPs P2X7受体及炎症介质表达 | 第22-40页 |
| 2.1 对象与材料 | 第22-25页 |
| 2.1.1 研究对象 | 第22页 |
| 2.1.2 实验主要仪器设备 | 第22-23页 |
| 2.1.3 实验主要试剂 | 第23页 |
| 2.1.4 实验主要试剂的配置 | 第23-25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-32页 |
| 2.2.1 实验分组 | 第25-26页 |
| 2.2.2 Real-time PCR检测牛BRPs P2X7受体、ICAM-1 及IL-6 的表达 | 第26-28页 |
| 2.2.3 Western Blot检测高糖对BRPs P2X7受体表达及其下游p38 MAPK信号通路关键蛋白磷酸化水平的影响 | 第28-31页 |
| 2.2.4 统计学方法 | 第31-32页 |
| 2.3 实验结果 | 第32-39页 |
| 2.3.1 高糖干预后周细胞内P2X7受体的m RNA及蛋白表达量情况 | 第32-33页 |
| 2.3.2 高糖状态下激活P2X7受体对炎性因子和粘附分子产生的影响 | 第33-34页 |
| 2.3.3 拮抗P2X7受体对高糖培养的BRPs和粘附分子合成的影响 | 第34-35页 |
| 2.3.4 高糖干预后周细胞p38 MAPK信号通路关键蛋白磷酸化水平变化 | 第35-36页 |
| 2.3.5 拮抗P2X7受体对周细胞p38 MAPK信号通路关键蛋白磷酸化水平的影响 | 第36-37页 |
| 2.3.6 阻断p38 MAPK信号通路对P2X7受体表达及炎性因子和粘附分子合成的影响 | 第37-39页 |
| 2.4 小结 | 第39-40页 |
| 三、讨论 | 第40-47页 |
| 3.1 原代牛视网膜微血管周细胞模型的建立 | 第40-41页 |
| 3.2 周细胞与糖尿病视网膜病变 | 第41页 |
| 3.3 P2X7受体与糖尿病视网膜病变 | 第41-42页 |
| 3.4 p38 MAPK信号通路与糖尿病视网膜病变 | 第42-43页 |
| 3.5 视网膜微血管周细胞IL-6 及ICAM-1 的产生与糖尿病视网膜病变 | 第43-44页 |
| 3.6 P2X7受体与P38 MAPK信号通路 | 第44-45页 |
| 3.7 创新点与特色 | 第45-46页 |
| 3.8 展望与不足 | 第46-47页 |
| 结论 | 第47-49页 |
| 参考文献 | 第49-56页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第56-57页 |
| 综述 P2X7受体与糖尿病 | 第57-73页 |
| 综述参考文献 | 第65-73页 |
| 致谢 | 第73-75页 |
| 个人简历 | 第75页 |
