| 摘要 | 第2-4页 |
| Summary | 第4-6页 |
| 缩略词表 | 第7-14页 |
| 第一部分 文献综述 | 第14-25页 |
| 1 骨组织工程技术 | 第14页 |
| 2 骨缺损及治疗方法 | 第14-18页 |
| 2.1 骨移植 | 第15页 |
| 2.2 人工骨 | 第15-17页 |
| 2.2.1 骨水泥材料 | 第16页 |
| 2.2.2 生物陶瓷 | 第16-17页 |
| 2.2.3 组织工程骨 | 第17页 |
| 2.3 膜引导组织再生技术 | 第17-18页 |
| 2.4 基因疗法 | 第18页 |
| 3 骨缺损修复材料 | 第18-22页 |
| 3.1 理想的骨组织工程支架材料 | 第18-19页 |
| 3.2 常用的骨组织工程支架材料 | 第19-20页 |
| 3.3 天然生物材料 | 第20页 |
| 3.4 高分子聚合物 | 第20-21页 |
| 3.5 复合支架材料 | 第21-22页 |
| 4 生长因子 | 第22页 |
| 5 种子细胞 | 第22-23页 |
| 6 凹凸棒石 | 第23-24页 |
| 7 本实验研究内容 | 第24-25页 |
| 第二部分 ATP/Col I/PCL支架材料制备与表征 | 第25-39页 |
| 1 前言 | 第25页 |
| 2 实验仪器与试剂 | 第25-26页 |
| 2.1 主要仪器 | 第25-26页 |
| 2.2 主要试剂 | 第26页 |
| 3 实验方法 | 第26-29页 |
| 3.1 I型胶原蛋白的提取 | 第26页 |
| 3.2 支架材料的制备 | 第26-27页 |
| 3.3 支架材料的表征及性能评价 | 第27-29页 |
| 3.3.1 支架材料的宏观和微观观察 | 第27页 |
| 3.3.2 支架材料的红外光谱表征 | 第27-28页 |
| 3.3.3 支架材料表面水接触角的测定 | 第28页 |
| 3.3.4 支架材料透气性的测定 | 第28页 |
| 3.3.5 支架材料吸水膨胀率的测定 | 第28页 |
| 3.3.6 支架材料孔隙率的测定 | 第28-29页 |
| 3.3.7 支架材料力学性能的测试 | 第29页 |
| 3.3.8 支架材料埋植体内的降解实验 | 第29页 |
| 4 统计学分析 | 第29页 |
| 5 结果 | 第29-36页 |
| 5.1 支架材料的形貌观察 | 第29-30页 |
| 5.2 支架材料的扫描电镜微观观察和成分分析 | 第30页 |
| 5.3 支架材料的表征分析 | 第30-36页 |
| 5.3.1 支架材料红外光谱分析 | 第30-33页 |
| 5.3.2 支架材料的物理性能评价 | 第33页 |
| 5.3.3 支架材料的力学性能评价 | 第33-35页 |
| 5.3.4 支架材料的体内埋植实验 | 第35-36页 |
| 6 讨论 | 第36-39页 |
| 第三部分 ATP/Col I/PCL支架材料体外成骨诱导性能的实验研究 | 第39-51页 |
| 1 前言 | 第39页 |
| 2 实验仪器与试剂 | 第39-40页 |
| 2.1 主要仪器 | 第39-40页 |
| 2.2 主要试剂 | 第40页 |
| 3 实验方法 | 第40-43页 |
| 3.1 D1细胞的培养 | 第40页 |
| 3.2 诱导D1细胞向成骨细胞分化 | 第40-41页 |
| 3.3 支架材料的生物相容性评价 | 第41-42页 |
| 3.3.1 SEM观察细胞复合支架材料 | 第41页 |
| 3.3.2 鬼笔环肽和H&E染色观察 | 第41-42页 |
| 3.4 CCK-8 检测支架材料上D1细胞的增殖活性 | 第42页 |
| 3.5 实时荧光定量PCR检测 | 第42-43页 |
| 4 统计学分析 | 第43-44页 |
| 5 结果 | 第44-49页 |
| 5.1 D1细胞的生长 | 第44页 |
| 5.2 茜素红染色 | 第44页 |
| 5.3 支架材料上细胞的粘附观察 | 第44-45页 |
| 5.3.1 SEM观察 | 第44页 |
| 5.3.2 H&E染色和鬼笔环肽染色观察 | 第44-45页 |
| 5.4 支架材料上细胞的增殖检测 | 第45页 |
| 5.5 检测支架材料上的细胞中成骨相关基因的表达 | 第45-49页 |
| 6 讨论 | 第49-51页 |
| 第四部分 ATP/Col I/PCL支架材料修复兔桡骨缺损的实验研究 | 第51-71页 |
| 1 前言 | 第51-52页 |
| 2 实验仪器与试剂 | 第52页 |
| 2.1 主要仪器 | 第52页 |
| 2.2 主要试剂 | 第52页 |
| 3 实验方法 | 第52-56页 |
| 3.1 实验动物 | 第52页 |
| 3.2 兔桡骨部位的骨缺损模型构建及分组情况 | 第52-53页 |
| 3.3 术后大体观察 | 第53页 |
| 3.4 X射线观察 | 第53页 |
| 3.5 观察指标 | 第53-54页 |
| 3.6 组织学染色 | 第54页 |
| 3.6.1 H&E染色 | 第54页 |
| 3.6.2 Masson染色 | 第54页 |
| 3.7 免疫组织化学染色 | 第54-55页 |
| 3.8 支架材料植入体内的SEM观察 | 第55-56页 |
| 3.9 Micro CT检测 | 第56页 |
| 3.9.1 Micro CT扫描观察 | 第56页 |
| 3.9.2 数据分析 | 第56页 |
| 4 统计学分析 | 第56页 |
| 5 结果 | 第56-69页 |
| 5.1 术后观察 | 第56-58页 |
| 5.2 X射线观察 | 第58-59页 |
| 5.3 组织学染色观察 | 第59-61页 |
| 5.3.1 H&E染色 | 第59-60页 |
| 5.3.2 Masson染色 | 第60-61页 |
| 5.4 免疫组织化学染色观察 | 第61-66页 |
| 5.4.1 Alkaline Phosphatase免疫组化观察 | 第61-62页 |
| 5.4.2 Type I Collagen免疫组化观察 | 第62-63页 |
| 5.4.3 Type Ⅱ collagen免疫组化观察 | 第63-64页 |
| 5.4.4 Osteopontin免疫组化观察 | 第64-65页 |
| 5.4.5 Osteocalcin免疫组化观察 | 第65-66页 |
| 5.5 SEM观察 | 第66-67页 |
| 5.6 Micro CT检测结果 | 第67-69页 |
| 5.6.1 Micro CT扫描图 | 第67-68页 |
| 5.6.2 数据分析 | 第68-69页 |
| 6 讨论 | 第69-71页 |
| 第五部分 结论与展望 | 第71-73页 |
| 1 结论 | 第71-72页 |
| 2 不足与展望 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
| 作者简介 | 第82-83页 |
| 导师简介 | 第83-84页 |
