| 缩略语表 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-12页 |
| ABSTRACT | 第12-16页 |
| 前言 | 第17-19页 |
| 文献回顾 | 第19-30页 |
| 第一部分 声预处理对急性声损伤的保护作用及耳蜗形态学改变的影响 | 第30-43页 |
| 1 材料 | 第30-31页 |
| 1.1 实验动物 | 第30页 |
| 1.2 实验主要试剂 | 第30页 |
| 1.3 实验主要仪器设备 | 第30-31页 |
| 2 方法 | 第31-33页 |
| 2.1 实验分组 | 第31页 |
| 2.2 实验流程 | 第31页 |
| 2.3 在体模型建立 | 第31页 |
| 2.4 ABR检测 | 第31-32页 |
| 2.5 基底膜铺片FITC鬼笔环肽染色及激光共聚焦显微镜观察 | 第32页 |
| 2.6 扫描电镜样本制备与观察 | 第32-33页 |
| 2.7 透射电镜样本制备与观察 | 第33页 |
| 2.8 统计学方法 | 第33页 |
| 3 结果 | 第33-40页 |
| 3.1 听力学检测结果 | 第33-35页 |
| 3.2 基底膜毛细胞形态观察 | 第35-39页 |
| 3.3 耳蜗轴螺旋神经元细胞形态观察 | 第39-40页 |
| 4 讨论 | 第40-43页 |
| 第二部分 声预处理保护作用分子机制的在体研究 | 第43-63页 |
| 1 材料 | 第43-44页 |
| 1.1 实验动物 | 第43页 |
| 1.2 实验主要试剂 | 第43-44页 |
| 1.3 实验主要仪器设备 | 第44页 |
| 2 方法 | 第44-48页 |
| 2.1 实验分组 | 第44页 |
| 2.2 实验流程 | 第44-45页 |
| 2.3 在体模型建立 | 第45页 |
| 2.4 免疫荧光染色及样本制备 | 第45-46页 |
| 2.5 Western blot检测 | 第46页 |
| 2.6 Quantitative RT-PCR | 第46-48页 |
| 3 结果 | 第48-58页 |
| 3.1 声预处理和噪声暴露对螺旋神经节细胞Hsp70表达的影响 | 第48-50页 |
| 3.2 声预处理和噪声暴露对螺旋神经节细胞Bmi1表达的影响 | 第50-52页 |
| 3.3 声预处理和噪声暴露对螺旋神经节细胞SOD1表达的影响 | 第52-54页 |
| 3.4 声预处理和噪声暴露对螺旋神经节细胞SOD2表达的影响 | 第54-56页 |
| 3.5 声预处理和噪声暴露对螺旋神经节细胞AKT磷酸化水平的影响 | 第56-58页 |
| 4 讨论 | 第58-63页 |
| 第三部分 相关分子机制的体外研究 | 第63-71页 |
| 1 材料 | 第63-64页 |
| 1.1 实验动物 | 第63页 |
| 1.2 实验主要试剂 | 第63页 |
| 1.3 实验主要仪器设备 | 第63-64页 |
| 2 方法 | 第64-65页 |
| 2.1 实验分组 | 第64页 |
| 2.2 实验流程 | 第64页 |
| 2.3 螺旋神经元细胞的分离培养 | 第64-65页 |
| 2.4 免疫荧光染色 | 第65页 |
| 3 结果 | 第65-68页 |
| 3.1 PTC-209抑制剂对体外培养螺旋神经元细胞Bmi1的表达影响 | 第65-66页 |
| 3.2 加入PTC-209抑制剂后，体外培养螺旋神经元细胞SOD1的表达变化 | 第66-67页 |
| 3.3 加入PTC-209抑制剂后，体外培养螺旋神经元细胞SOD2的表达变化 | 第67页 |
| 3.4 加入PTC-209抑制剂后，体外培养螺旋神经元细胞Hsp70的表达变化 | 第67-68页 |
| 4 讨论 | 第68-71页 |
| 小结 | 第71-74页 |
| 参考文献 | 第74-85页 |
| 附录 | 第85-90页 |
| 蛋白定量标准曲线绘制 | 第85页 |
| 聚丙烯酰胺凝胶溶液的配置 | 第85-86页 |
| 过表达Hsp70腺病毒载体构建 | 第86页 |
| 目的基因、内参基因β -Actin RT-PCR扩增曲线和溶解曲线 | 第86-88页 |
| ABR检测室 | 第88页 |
| ABR电极固定部位 | 第88-89页 |
| 噪声发生系统和噪音箱 | 第89-90页 |
| 个人简历和研究成果 | 第90-92页 |
| 致谢 | 第92-93页 |
