| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩略语/符号说明 | 第11-13页 |
| 前言 | 第13-16页 |
| 研究现状、成果 | 第13-15页 |
| 研究目的、方法 | 第15-16页 |
| 1 对象和方法 | 第16-28页 |
| 1.1 主要材料与试剂 | 第16-17页 |
| 1.2 主要仪器与设备 | 第17页 |
| 1.3 巯基化壳聚糖（CS-SH）的制备 | 第17-18页 |
| 1.4 马来酸葡聚糖（Dex-Ma）的制备 | 第18页 |
| 1.5 CS-SH巯基含量的测定 | 第18-19页 |
| 1.6 Dex-Ma取代度的测定 | 第19页 |
| 1.7 CS-SH / Dex-Ma复合水凝胶的制备 | 第19页 |
| 1.8 水凝胶的核磁及红外表征 | 第19页 |
| 1.9 水凝胶扫描电镜下形态学表征 | 第19页 |
| 1.10 水凝胶溶胀性能测试 | 第19-20页 |
| 1.11 水凝胶流变学性能测试 | 第20页 |
| 1.12 水凝胶生物相容性（细胞毒性）评价 | 第20-21页 |
| 1.12.1 凝胶浸出液的制备 | 第20页 |
| 1.12.2 细胞培养 | 第20-21页 |
| 1.12.3 MTT实验 | 第21页 |
| 1.13 负载IL-4 的CSDM水凝胶的体外研究 | 第21-28页 |
| 1.13.1 研究对象 | 第21页 |
| 1.13.2 细胞培养 | 第21-22页 |
| 1.13.3 IL-4 及LPS的配制 | 第22页 |
| 1.13.4 负载IL-4 水凝胶的制备 | 第22页 |
| 1.13.5 RAW264.7 巨噬细胞活力测定 | 第22页 |
| 1.13.6 RAW264.7 巨噬细胞的干预方法 | 第22-23页 |
| 1.13.7 RAW264.7 巨噬细胞形态学变化 | 第23页 |
| 1.13.8 一氧化氮的测定 | 第23页 |
| 1.13.9 ELISA测定细胞因子TNF-a和IL-10 分泌情况 | 第23-25页 |
| 1.13.10 qPCR检测RAW264.7 巨噬细胞相关因子mRNA表达水平 | 第25-28页 |
| 2 结果 | 第28-38页 |
| 2.1 CS-SH的成功制备及其巯基含量 | 第28页 |
| 2.2 Dex-Ma的成功制备及马来酸取代度 | 第28-29页 |
| 2.3 CS-SH/Dex-Ma水凝胶的成功合成 | 第29-30页 |
| 2.4 CS-SH/Dex-Ma水凝胶的形态学 | 第30页 |
| 2.5 CS-SH/Dex-Ma水凝胶的溶胀性能 | 第30-31页 |
| 2.6 CS-SH/Dex-Ma水凝胶的流变性能 | 第31-32页 |
| 2.7 CS-SH/Dex-Ma水凝胶的生物相容性 | 第32-34页 |
| 2.8 RAW264.7 巨噬细胞的形态变化 | 第34-35页 |
| 2.9 RAW264.7 巨噬细胞释放NO水平的测定 | 第35页 |
| 2.10 ELISA法检测RAW264.7 巨噬细胞TNF-a和IL-10 水平 | 第35-37页 |
| 2.11 qPCR法检测RAW264.7 巨噬细胞iNOS和Arg-1 mRNA相对表达量 | 第37-38页 |
| 3 讨论 | 第38-43页 |
| 3.1 糖尿病足溃疡及伤口愈合过程 | 第38页 |
| 3.2 CSDM水凝胶的基本性能 | 第38-39页 |
| 3.3 负载IL-4 的CSDM水凝胶的细胞学相关测试 | 第39-43页 |
| 结论 | 第43-45页 |
| 参考文献 | 第45-53页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第53-54页 |
| 综述 巨噬细胞在糖尿病足溃疡组织修复中作用的研究进展 | 第54-71页 |
| 综述参考文献 | 第62-71页 |
| 致谢 | 第71-73页 |
| 个人简历 | 第73页 |
