| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 1 前言 | 第9-14页 |
| 1.1 选题来源 | 第9页 |
| 1.2 核桃综述 | 第9-10页 |
| 1.2.1 核桃简介 | 第9页 |
| 1.2.2 核桃蛋白的营养价值 | 第9页 |
| 1.2.3 核桃多肽的研究进展 | 第9-10页 |
| 1.3 糖尿病综述 | 第10-11页 |
| 1.3.1 糖尿病简介 | 第10页 |
| 1.3.2 糖尿病分类及症状 | 第10-11页 |
| 1.3.3 Ⅱ型糖尿病治疗药物 | 第11页 |
| 1.4 降血糖多肽国内外研究进展 | 第11-13页 |
| 1.4.1 国内研究进展 | 第11-12页 |
| 1.4.2 国外研究进展 | 第12-13页 |
| 1.5 本论文研究创新和目的意义 | 第13页 |
| 1.6 主要研究内容 | 第13-14页 |
| 2 材料与方法 | 第14-20页 |
| 2.1 材料 | 第14-15页 |
| 2.1.1 试验原料及动物 | 第14页 |
| 2.1.2 试剂 | 第14-15页 |
| 2.1.3 主要仪器与设备 | 第15页 |
| 2.2 试验方法 | 第15-20页 |
| 2.2.1 核桃多肽制备 | 第15-16页 |
| 2.2.2 核桃多肽对 α-葡萄糖苷酶抑制活性研究 | 第16-17页 |
| 2.2.3 不同分子量多肽对胰岛素抵抗模型下HepG2细胞的影响 | 第17-18页 |
| 2.2.4 不同分子量多肽对高糖损伤HUVEC细胞模型的保护作用 | 第18-19页 |
| 2.2.5 核桃降糖多肽对Ⅱ型糖尿病小鼠体内降糖活性验证 | 第19页 |
| 2.2.6 葡聚糖凝胶色谱层析纯化核桃多肽 | 第19-20页 |
| 3 结果与分析 | 第20-41页 |
| 3.1 核桃分离蛋白 α-葡萄糖苷酶抑制活性研究 | 第20-24页 |
| 3.1.1 单因素试验结果 | 第20-22页 |
| 3.1.2 不同分子量多肽对 α-葡萄糖苷酶抑制活性研究 | 第22-24页 |
| 3.2 不同分子量多肽对胰岛素抵抗模型下HepG2细胞的影响 | 第24-28页 |
| 3.2.1 HepG2细胞生长实验（MTT法） | 第24-25页 |
| 3.2.2 HepG2细胞胰岛素抵抗模型的建立 | 第25-26页 |
| 3.2.3 HepG2细胞胰岛素抵抗模型葡萄糖消耗量的测定 | 第26页 |
| 3.2.4 HepG2细胞胰岛素抵抗模型GK活力的测定 | 第26-27页 |
| 3.2.5 HepG2细胞胰岛素抵抗模型G6P活力的测定 | 第27-28页 |
| 3.3 不同分子量多肽对高糖损伤HUVEC细胞的保护作用 | 第28-33页 |
| 3.3.1 建立高糖模型（MTT比色法） | 第29页 |
| 3.3.2 ELISA法测定细胞中NO含量 | 第29-30页 |
| 3.3.3 ELISA法测定细胞中ET-1 含量 | 第30-31页 |
| 3.3.4 ELISA法测定细胞中t-PA含量 | 第31页 |
| 3.3.5 ELISA法测定细胞中PAI-1 含量 | 第31-33页 |
| 3.4 核桃降糖多肽对Ⅱ型糖尿病小鼠体内降糖活性验证 | 第33-38页 |
| 3.4.1 小鼠体重饮水量的测定 | 第33-34页 |
| 3.4.2 小鼠血清中胰岛素含量的测定 | 第34页 |
| 3.4.3 小鼠空腹血糖含量的测定 | 第34-35页 |
| 3.4.4 小鼠血清中血脂含量的测定 | 第35-37页 |
| 3.4.5 小鼠肝脏肝糖原含量的测定 | 第37-38页 |
| 3.4.6 小鼠肝脏GK活力的测定 | 第38页 |
| 3.5 葡聚糖凝胶层析结果 | 第38-41页 |
| 3.5.1 Sephadex G-25 凝胶层析 | 第39页 |
| 3.5.2 Sephadex G-15 凝胶层析 | 第39-41页 |
| 4 讨论 | 第41-42页 |
| 5 结论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-47页 |
| 作者简介 | 第47-48页 |
| 致谢 | 第48页 |
