| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第16-29页 |
| 1.1 引言 | 第16-25页 |
| 1.1.0 植物对胁迫的响应 | 第16-19页 |
| 1.1.1 植物转录因子 | 第19-20页 |
| 1.1.2 植物参与非生物胁迫的转录因子 | 第20-21页 |
| 1.1.3 植物WOX转录因子研究进展 | 第21-25页 |
| 1.1.3.1 植物WOX转录因子的结构 | 第21-22页 |
| 1.1.3.2 植物WOX转录因子的功能研究 | 第22-23页 |
| 1.1.3.3 植物WOX转录因子与基因的互作 | 第23-24页 |
| 1.1.3.3 植物WOX转录因子抗逆研究 | 第24-25页 |
| 1.1.4 植物根系与抗逆胁迫的关系 | 第25页 |
| 1.2 问题的提出、拟解决的问题 | 第25-26页 |
| 1.3 研究的目的、意义以及主要内容 | 第26-27页 |
| 1.3.1 研究的目的、意义 | 第26页 |
| 1.3.2 研究的主要内容 | 第26-27页 |
| 1.4 技术路线图 | 第27-29页 |
| 第二章 毛白杨PtoWOX11/12a基因序列和表达模式分析 | 第29-40页 |
| 2.1 试验材料 | 第29-30页 |
| 2.1.1 植物材料及生长条件 | 第29页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第29页 |
| 2.1.3 溶液配制 | 第29-30页 |
| 2.2 试验方法 | 第30-33页 |
| 2.2.1 毛白杨PtoWOX11/12a基因生物信息学分析 | 第30页 |
| 2.2.2 毛白杨PtoWOX11/12a基因逆境下的表达模式分析 | 第30-33页 |
| 2.3 结果与分析 | 第33-38页 |
| 2.3.1 毛白杨PtoWOX11/12a序列分析 | 第33-35页 |
| 2.3.2 毛白杨PtoWOX11/12a基因启动子序列分析 | 第35-36页 |
| 2.3.3 毛白杨PtoWOX11/12a基因对盐、干旱胁迫的响应 | 第36-38页 |
| 2.4 讨论 | 第38-39页 |
| 2.5 小结 | 第39-40页 |
| 第三章 毛白杨PtoWOX11/12a转录激活研究 | 第40-48页 |
| 3.1 试验材料 | 第40-42页 |
| 3.1.1 菌种与载体 | 第40页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第40页 |
| 3.1.3 主要培养基 | 第40-41页 |
| 3.1.4 溶液配制 | 第41-42页 |
| 3.2 试验方法 | 第42-45页 |
| 3.2.1 酵母表达载体pGBKT7-PtoWOX11/12a N1-N2的构建 | 第42-44页 |
| 3.2.2 酵母Y2HGold感受态细胞的制备以及转化 | 第44-45页 |
| 3.3 结果与分析 | 第45-47页 |
| 3.3.1 酵母表达载体pGBKT7-PtoWOX11/12a N1-N2的获得 | 第45页 |
| 3.3.2 PtoWOX11/12a蛋白转录激活区位于C端 | 第45-47页 |
| 3.4 讨论 | 第47页 |
| 3.5 小结 | 第47-48页 |
| 第四章 毛白杨PtoWOX11/12a基因上游调控因子研究 | 第48-64页 |
| 4.1 试验材料 | 第48-50页 |
| 4.1.1 植物材料及生长条件 | 第48页 |
| 4.1.2 菌种与载体 | 第48页 |
| 4.1.3 主要试剂 | 第48-49页 |
| 4.1.4 溶液配制 | 第49页 |
| 4.1.5 溶液配制 | 第49-50页 |
| 4.2 试验方法 | 第50-57页 |
| 4.2.1 酵母cDNA文库的构建 | 第50页 |
| 4.2.2 酵母重组报告载体pHIS2-DRE的构建 | 第50-51页 |
| 4.2.3 pHIS2-DRE报告载体的 3-AT浓度确定 | 第51页 |
| 4.2.4 酵母cDNA文库的筛选 | 第51-52页 |
| 4.2.5 酵母单杂交确定PtoWOX11/12a基因上游调控因子 | 第52-54页 |
| 4.2.6 瞬时转化原生质体验证PtoWOX11/12a基因上游调控因子 | 第54-56页 |
| 4.2.7 PtoWOX11/12a基因上游调控因子的表达模式分析 | 第56-57页 |
| 4.3 结果与分析 | 第57-62页 |
| 4.3.1 酵母文库的构建 | 第57-58页 |
| 4.3.2 pHIS2-DRE报告载体的获得 | 第58页 |
| 4.3.3 pHIS2-DRE报告载体 3-AT浓度选择 | 第58页 |
| 4.3.4 阳性克隆的互作分析 | 第58-60页 |
| 4.3.5 瞬时转化原生质体分析PtoWOX11/12a基因上游调控因子 | 第60-62页 |
| 4.3.6 PtoWOX11/12a与PtoAP2的共表达分析 | 第62页 |
| 4.4 讨论 | 第62-63页 |
| 4.5 小结 | 第63-64页 |
| 第五章 转基因PtoWOX11/12a杨树非生物胁迫研究 | 第64-93页 |
| 5.1 试验材料 | 第64-67页 |
| 5.1.1 植物材料及生长条件 | 第64页 |
| 5.1.2 菌种与载体 | 第64页 |
| 5.1.3 主要试剂 | 第64-65页 |
| 5.1.4 主要培养基 | 第65页 |
| 5.1.5 溶液配制 | 第65-67页 |
| 5.2 试验方法 | 第67-74页 |
| 5.2.1 抑制表达PtoWOX11/12a转基因材料制备 | 第67-68页 |
| 5.2.2 PtoWOX11/12a对杨树扦插苗生长发育的影响 | 第68-69页 |
| 5.2.3 PtoWOX11/12a在定根诱导过程中基因表达量分析 | 第69-70页 |
| 5.2.4 转基因PtoWOX11/12a抗逆功能分析 | 第70-73页 |
| 5.2.5 嫁接实验 | 第73-74页 |
| 5.2.6 数据分析 | 第74页 |
| 5.3 结果与分析 | 第74-90页 |
| 5.3.1 显性抑制PtoWOX11/12a转基因材料的获得 | 第74-75页 |
| 5.3.2 PtoWOX11/12a基因对杨树扦插苗生长发育的影响 | 第75-80页 |
| 5.3.3 过表达PtoWOX11/12a增强转基因杨树耐盐、抗旱能力 | 第80-82页 |
| 5.3.4 嫁接实验分析 | 第82-83页 |
| 5.3.5 过表达PtoWOX11/12a转基因杨树降低ROS含量和细胞膜损伤 | 第83-86页 |
| 5.3.6 过表达PtoWOX11/12a转基因杨树提高保护性酶活 | 第86页 |
| 5.3.7 过表达PtoWOX11/12a转基因杨树提高辅氨酸和可溶性蛋白含量 | 第86-88页 |
| 5.3.8 过表达PtoWOX11/12a转基因杨树提高净光合速率和降低了MDA含量 | 第88-90页 |
| 5.4 讨论 | 第90-92页 |
| 5.5 小结 | 第92-93页 |
| 第六章 结论与展望 | 第93-96页 |
| 6.1 结论 | 第93-94页 |
| 6.2 展望 | 第94-96页 |
| 参考文献 | 第96-107页 |
| 在读期间的学术研究 | 第107-108页 |
| 致谢 | 第108页 |
