| 致谢 | 第5-6页 |
| 中文摘要 | 第6-9页 |
| 英文摘要 | 第9-12页 |
| 英文缩写注释表 | 第13-18页 |
| 研究背景 | 第18-20页 |
| 第一部分 具有抗肝癌疗效的MIRNA筛选 | 第20-58页 |
| 研究背景 | 第20-21页 |
| 材料 | 第21-26页 |
| 1 细胞 | 第21-22页 |
| 2 主要仪器设备 | 第22-23页 |
| 3 主要试剂及配制方法 | 第23-25页 |
| 4 常用试剂的配置 | 第25-26页 |
| 方法 | 第26-33页 |
| 1、细胞培养 | 第26-27页 |
| 2、细胞增殖实验 | 第27页 |
| 3、细胞周期分析 | 第27页 |
| 4、miRNA芯片筛选差异表达的miRNA | 第27-28页 |
| 5、miRNA转染实验 | 第28页 |
| 6、流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第28页 |
| 7、细胞内总RNA提取 | 第28页 |
| 8、细胞总miRNA提取 | 第28-29页 |
| 9、RNA逆转录 | 第29页 |
| 10、荧光定量PCR | 第29-30页 |
| 11、miRNA逆转录 | 第30页 |
| 12、miRNA探针法荧光定量PCR | 第30-31页 |
| 13、BCA法蛋白定量 | 第31页 |
| 14、Western Blot检测 | 第31-33页 |
| 15、统计学分析 | 第33页 |
| 结果 | 第33-54页 |
| 一、miR-34a在肝癌治疗中的作用及机制研究 | 第33-38页 |
| 二、miR-141在抗肝癌转移中的作用及机制研究 | 第38-42页 |
| 三、miR-122的抗肝癌作用以及在肝癌化疗增敏中的作用及机制研究 | 第42-43页 |
| 四、miR-199~*在肝癌化疗增敏中的作用及机制研究 | 第43-50页 |
| 五、4种miRNA的体外5-FU增敏研究 | 第50-54页 |
| 讨论 | 第54-58页 |
| 第二部分 携带治疗性MIRNA的脂肪间充质干细胞(AMSC)来源的EXOSOME在肝癌治疗中的应用 | 第58-84页 |
| 1 细胞 | 第59页 |
| 2 主要仪器设备 | 第59-60页 |
| 3 主要试剂及配制方法 | 第60-63页 |
| 4 常用试剂的配置 | 第63-64页 |
| 方法 | 第64-72页 |
| 1、细胞培养 | 第64页 |
| 2、细胞增殖实验 | 第64-65页 |
| 3、细胞周期分析 | 第65页 |
| 4、miRNA芯片筛选差异表达的miRNA | 第65页 |
| 5、miRNA转染实验 | 第65页 |
| 6、流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第65-66页 |
| 7、细胞内总RNA提取 | 第66页 |
| 8、细胞总miRNA提取 | 第66页 |
| 9、RNA逆转录 | 第66-67页 |
| 10、荧光定量PCR | 第67页 |
| 11、miRNA逆转录 | 第67-68页 |
| 12、miRNA探针法荧光定量PCR | 第68页 |
| 13、BCA法蛋白定量 | 第68-69页 |
| 14、Western Blot检测 | 第69-70页 |
| 15、荷瘤模型构建 | 第70-71页 |
| 16、小动物活体成像 | 第71页 |
| 17、携带特殊miRNA的Exosome分离提取 | 第71页 |
| 18、Exosome的鉴定 | 第71页 |
| 19、AMSC的分离方法 | 第71-72页 |
| 20、统计学分析 | 第72页 |
| 结果 | 第72-81页 |
| 一、携带miR-122的exosome在荷瘤小鼠体内对5-FU的肝癌化疗增敏研究 | 第72-78页 |
| 二、携带miR-199~*的exosome在荷瘤小鼠体内对5-FU的肝癌化疗增敏研究 | 第78-81页 |
| 讨论 | 第81-83页 |
| 今后实验计划及展望 | 第83-84页 |
| 参考文献 | 第84-91页 |
| 综述 | 第91-117页 |
| 参考文献 | 第105-117页 |
| 作者简历及在学期间所取得的科研成果 | 第117-119页 |
