| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4页 |
| 1 引言 | 第10-17页 |
| 1.1 迷迭香的生物学特征及化学分析 | 第10页 |
| 1.2 迷迭香的化学分析 | 第10-11页 |
| 1.3 迷迭香及迷迭香酸的药理作用 | 第11-13页 |
| 1.3.1 迷迭香的药理作用 | 第11-12页 |
| 1.3.2 迷迭香酸的药理学分析 | 第12-13页 |
| 1.4 天然活性成分的提取方法 | 第13-15页 |
| 1.4.1 超临界流体萃取法 | 第13-14页 |
| 1.4.2 超声波辅助提取法 | 第14-15页 |
| 1.5 迷迭香提取液用于腐败菌抑制的研究 | 第15页 |
| 1.6 研究意义及主要内容 | 第15-17页 |
| 1.6.1 研究意义 | 第15-16页 |
| 1.6.2 研究内容 | 第16页 |
| 1.6.3 论文创新点 | 第16-17页 |
| 2 材料和方法 | 第17-23页 |
| 2.1 材料 | 第17页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第17页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第17页 |
| 2.2 迷迭香酸提取工艺条件的优化 | 第17-19页 |
| 2.2.1 迷迭香酸提取率的计算 | 第17-18页 |
| 2.2.2 迷迭香叶粉碎目数对迷迭香酸提取率影响的评价 | 第18页 |
| 2.2.3 固液比对迷迭香酸提取率影响的评价 | 第18页 |
| 2.2.4 乙醇浓度对迷迭香酸提取率影响的评价 | 第18页 |
| 2.2.5 超声波提取时间对迷迭香酸提取率影响的评价 | 第18页 |
| 2.2.6 超声波提取功率对迷迭香酸提取率影响的评价 | 第18-19页 |
| 2.2.7 超声波提取温度对迷迭香酸提取率影响的评价 | 第19页 |
| 2.2.8 基于正交实验超声波提取迷迭香酸条件的优化 | 第19页 |
| 2.2.9 验证性试验 | 第19页 |
| 2.3 基于GC-MS的不同时间点迷迭香提取液化合物的鉴定 | 第19-20页 |
| 2.3.1 迷迭香样品的采集及提取 | 第19页 |
| 2.3.2 GC分析条件 | 第19-20页 |
| 2.3.3 GC/MS分析条件 | 第20页 |
| 2.4 迷迭香提取液抑菌作用研究 | 第20-21页 |
| 2.4.1 微生物菌株及培养 | 第20页 |
| 2.4.2 抗菌活性测定 | 第20-21页 |
| 2.5 迷迭香提取液对香梨青霉病控制的研究 | 第21-22页 |
| 2.5.1 培养基的制作 | 第21页 |
| 2.5.2 病原菌的分离纯化 | 第21页 |
| 2.5.3 孢子悬浮液的制备 | 第21页 |
| 2.5.4 迷迭香提取液浓度的筛选 | 第21-22页 |
| 2.5.5 含迷迭香提取液复合膜的制备 | 第22页 |
| 2.5.6 含迷迭香提取液复合膜对损伤接种香梨病斑直径的影响 | 第22页 |
| 2.6 数据处理 | 第22-23页 |
| 3 结果与分析 | 第23-35页 |
| 3.1 迷迭香酸提取工艺条件的优化 | 第23-28页 |
| 3.1.1 迷迭香叶粉碎目数对迷迭香酸提取率影响的评价 | 第23页 |
| 3.1.2 固液比对迷迭香酸提取率影响的评价 | 第23-24页 |
| 3.1.3 乙醇浓度对迷迭香酸提取率影响的评价 | 第24-25页 |
| 3.1.4 超声波提取时间对迷迭香酸提取率影响的评价 | 第25-26页 |
| 3.1.5 超声波提取功率对迷迭香酸提取率影响的评价 | 第26页 |
| 3.1.6 超声波提取温度对迷迭香酸提取率影响的评价 | 第26-28页 |
| 3.2 不同采样时间点迷迭香提取液化合物分析 | 第28-30页 |
| 3.3 迷迭香提取液抑菌作用研究 | 第30-33页 |
| 3.3.1 迷迭香提取液对不同微生物最低抑菌浓度的确定 | 第30-32页 |
| 3.3.2 迷迭香提取液对不同微生物最小杀菌浓度的确定 | 第32-33页 |
| 3.4 迷迭香提取液对香梨青霉病控制的研究 | 第33-35页 |
| 3.4.1 迷迭香提取液对香梨病斑直径的影响 | 第33页 |
| 3.4.2 迷迭香提取液复合膜对损伤接种P.expansum香梨病斑直径的影响 | 第33-35页 |
| 4 结论 | 第35-36页 |
| 致谢 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-41页 |
| 作者简介 | 第41页 |
