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不同姬松茸提取物对对虾白斑病毒感染能力的影响研究

中文摘要第1-8页
英文摘要第8-10页
第一章 文献综述第10-23页
 1 对虾免疫研究概况第10-15页
  1.1 细胞免疫第10-11页
  1.2 体液免疫与免疫相关酶类第11-15页
   1.2.1 酚氧化酶原激活系统第12-13页
   1.2.2 凝集素第13页
   1.2.3 细胞毒性活性氧第13页
   1.2.4 溶酶体酶第13-14页
   1.2.5 抗菌肽第14-15页
   1.2.6 凝血因子和信息传递因子第15页
 2 免疫增强剂-多糖在对虾养殖中的应用第15-23页
  2.1 活性多糖的种类第16页
  2.2 活性多糖增强对虾免疫的作用机制第16-17页
  2.3 活性多糖在对虾养殖中的研究概况第17-21页
   2.3.1 葡聚糖第18-19页
   2.3.2 肽聚糖第19-20页
   2.3.3 脂多糖第20页
   2.3.4 其他活性多糖第20-21页
  2.4 应用活性多糖须注意的问题第21-22页
  2.5 活性多糖在对虾养殖中的应用前景第22-23页
第二章 对虾白斑病毒的体内扩增与制备第23-29页
 1 实验用品第23-24页
  1.1 实验材料第23页
  1.2 实验仪器第23-24页
  1.3 实验药品第24页
  1.4 常用溶液配方第24页
 2 实验方法第24-26页
  2.1 对虾白斑病毒的体内扩增第24-25页
  2.2 对虾白斑病毒液的制备第25页
  2.3 DNA提取第25页
  2.4 对虾白斑病毒的PCR检测第25-26页
  2.5 琼脂糖凝胶电泳第26页
 3 实验结果第26-27页
 4 讨论第27-29页
第三章 姬松茸(Agaricus blazei Murill)水溶液对日本对虾原代培养淋巴细胞抵抗对虾白斑病毒的感染影响第29-43页
 1 实验用品第29-31页
  1.1 实验材料第29-30页
  1.2 实验仪器第30页
  1.3 实验药品第30页
  1.4 K199细胞培养液(pH7.5)的配方第30-31页
 2 实验方法第31-33页
  2.1 三种姬松茸水提物的制备第31页
  2.2 对虾淋巴细胞的原代培养第31页
  2.3 WSSV的体外攻毒实验第31-32页
  2.4 WSSV检测第32-33页
 3 实验结果第33-40页
  3.1 对虾淋巴细胞的原代培养第33-34页
  3.2 低温水提物对WSSV侵染对虾淋巴细胞的影响第34-36页
  3.3 室温水提物对WSSV侵染对虾淋巴细胞的影响第36-38页
  3.4 热水水提物对WSSV侵染对虾淋巴细胞的影响第38-40页
 4 讨论第40-42页
  4.1 对虾淋巴细胞原代培养与体外WSSV对淋巴细胞的侵染第40-41页
  4.2 姬松茸水提物对WSSV感染日本对虾原代淋巴细胞的影响第41-42页
 5 结论第42-43页
第四章 姬松茸水溶液的酒精沉淀物对日本对虾原代淋巴细胞抵抗WSSV感染的作用影响第43-59页
 1 实验用品第43-44页
  1.1 实验材料第43页
  1.2 实验仪器第43页
  1.3 实验药品第43-44页
 2 实验方法第44-46页
  2.1 姬松茸水溶液的酒精沉淀物的制备第44页
  2.2 对虾淋巴细胞的原代培养第44-45页
  2.3 酒精沉淀物对淋巴细胞的毒性实验第45页
  2.4 WSSV的体外攻毒实验第45页
  2.5 WSSV检测第45-46页
 3 实验结果第46-56页
  3.1 姬松茸水溶液的酒精沉淀提取物制备第46-47页
  3.2 姬松茸水溶液的酒精沉淀物对淋巴细胞的细胞毒性影响第47-49页
  3.3 酒精沉淀物对10倍稀释的WSSV侵染细胞的影响作用第49-52页
  3.4 酒精沉淀物对20倍稀释的WSSV侵染细胞的影响作用第52-54页
  3.5 酒精沉淀物对30倍稀释的WSSV侵染细胞的影响作用第54-56页
 4 讨论第56-58页
  4.1 姬松茸酒精沉淀提取物与对日本对虾淋巴细胞的细胞毒性第56-57页
  4.2 姬松茸水溶液酒精沉淀物对 WSSV侵染日本对虾淋巴细胞的抑制作用第57-58页
 5 结论第58-59页
参考文献第59-66页
致谢第66页

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