| 中文摘要 | 第1-7页 |
| 英文摘要 | 第7-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-33页 |
| ·前言 | 第10-11页 |
| ·玻璃海鞘的分类地位与生物学概述 | 第11-16页 |
| ·玻璃海鞘的研究背景 | 第16-21页 |
| ·玻璃海鞘作为无脊椎动物免疫研究模式的可行性 | 第21-23页 |
| ·免疫与细胞凋亡 | 第23-29页 |
| ·细胞凋亡的判定和研究方法 | 第29-31页 |
| ·本研究的目的与意义 | 第31-33页 |
| 第二章 玻璃海鞘的实验养殖 | 第33-43页 |
| ·材料与方法 | 第34-35页 |
| ·实验动物 | 第34页 |
| ·玻璃海鞘的实验室养殖 | 第34页 |
| ·受精卵的获得和孵化 | 第34-35页 |
| ·卵细胞滤泡层和支持细胞的去除 | 第35页 |
| ·人工养殖的玻璃海鞘的胚胎发育和幼体海鞘观察 | 第35页 |
| ·统计分析 | 第35页 |
| ·结果与讨论 | 第35-43页 |
| ·不同饵料的饲养效果 | 第36页 |
| ·不同温度下玻璃海鞘的发育时序和孵化率 | 第36-37页 |
| ·胚胎发育 | 第37-40页 |
| ·幼体海鞘观察 | 第40-41页 |
| ·玻璃海鞘作为模式动物的应用前景 | 第41-43页 |
| 第三章 玻璃海鞘血细胞的分类与功能 | 第43-65页 |
| ·材料与方法 | 第45-48页 |
| ·实验动物 | 第45页 |
| ·血细胞的采集与培养 | 第45页 |
| ·血细胞的细胞化学分析 | 第45-46页 |
| ·细胞酶学分析 | 第46-47页 |
| ·免疫组化 | 第47页 |
| ·嗜菌作用 | 第47-48页 |
| ·细胞骨架分析 | 第48页 |
| ·DAPI 染色 | 第48页 |
| ·超微结构分析 | 第48页 |
| ·流式细胞仪分析 | 第48页 |
| ·结果 | 第48-53页 |
| ·血细胞类型 | 第49-52页 |
| ·流式细胞仪分选 | 第52-53页 |
| ·讨论 | 第53-65页 |
| 第四章 玻璃海鞘血细胞感染转EGFP的大肠杆菌的应答反应 | 第65-83页 |
| ·材料与方法 | 第65-69页 |
| ·实验动物 | 第65页 |
| ·转绿色荧光蛋白的大肠杆菌的构建 | 第65-67页 |
| ·大肠杆菌的体内注射和体外感染 | 第67页 |
| ·总血细胞计数 | 第67页 |
| ·表达绿色荧光蛋白的大肠杆菌的计数 | 第67-68页 |
| ·扫描电镜与透射电镜 | 第68页 |
| ·免疫组化分析 | 第68页 |
| ·荧光显微镜和激光共聚焦显微镜观察 | 第68页 |
| ·统计 | 第68-69页 |
| ·结果 | 第69-76页 |
| ·注射E.coli 对玻璃海鞘THC的影响 | 第69页 |
| ·注射后E.coli 在玻璃海鞘血淋巴中的动态变化 | 第69-70页 |
| ·玻璃海鞘血细胞感染E.coli 的细胞学变化 | 第70-74页 |
| ·注射E.coli对玻璃海鞘CD34~+血细胞的影响 | 第74-76页 |
| ·讨论 | 第76-83页 |
| 第五章 大肠杆菌和鳗弧菌感染引起玻璃海鞘的血细胞凋亡 | 第83-102页 |
| ·材料与方法 | 第86-89页 |
| ·实验动物 | 第86页 |
| ·大肠杆菌和鳗弧菌准备 | 第86页 |
| ·大肠杆菌和鳗弧菌感染 | 第86页 |
| ·单细胞凝胶电泳 | 第86-88页 |
| ·扫描电镜与透射电镜 | 第88页 |
| ·TUNEL 原位分析细胞凋亡 | 第88页 |
| ·激光共聚焦显微镜和荧光显微镜观察 | 第88-89页 |
| ·血细胞凋亡的流式细胞仪分析 | 第89页 |
| ·统计 | 第89页 |
| ·结果 | 第89-97页 |
| ·单细胞凝胶电泳 | 第89-90页 |
| ·电子显微镜结果 | 第90-93页 |
| ·TUNEL分析 | 第93-95页 |
| ·流式细胞仪检测结果 | 第95-96页 |
| ·注射大肠杆菌和鳗弧菌后细胞凋亡的统计 | 第96-97页 |
| ·讨论 | 第97-102页 |
| 主要结果与结论 | 第102-104页 |
| 参考文献 | 第104-120页 |
| 已完成和发表文章 | 第120-121页 |
| 致谢 | 第121页 |
