中文摘要 | 第1-9页 |
Abstract | 第9-11页 |
引言 | 第11-30页 |
1 新城疫及新城疫病毒概述 | 第11-17页 |
·病原学 | 第11页 |
·NDV的理化学特性 | 第11-12页 |
·NDV的生物学活性 | 第12页 |
·NDV的培养特性 | 第12-13页 |
·NDV的分子生物学 | 第13-14页 |
·NDV的致病性及其分子基础 | 第14-16页 |
·NDV的抗原性、基因型 | 第16页 |
·ND的分子流行病学研究及防制 | 第16-17页 |
2 ND诊断技术研究进展 | 第17-25页 |
·病原检测 | 第18页 |
·NDV的常规分离与鉴定 | 第18页 |
·电镜技术 | 第18页 |
·血清学诊断方法 | 第18-23页 |
·红细胞凝集试验(HA)及红细胞凝集抑制试验(HI) | 第18-19页 |
·琼脂扩散试验(AGP) | 第19页 |
·荧光抗体技术 | 第19-20页 |
·免疫组化技术 | 第20页 |
·乳胶凝集试验( LAT) | 第20页 |
·酶联免疫吸附试验(ELISA) | 第20-23页 |
·分子主物学诊断技木 | 第23-25页 |
·反转录一聚合酶链反应( RT-PCR)技术 | 第23-24页 |
·核酸探针技术 | 第24-25页 |
·抗多肽抗体技术 | 第25页 |
3 单克隆抗体技术及其在ND(V)研究中的应用 | 第25-29页 |
·杂交瘤技术的原理与方法 | 第25-26页 |
·单克隆抗体技术在ND(V)研究中的应用 | 第26-29页 |
·单克隆抗体在病毒蛋白结构及功能检测中的应用 | 第26-27页 |
·单克隆抗体用于变异分析及毒株分型 | 第27-29页 |
·单克隆抗体用于ND诊断 | 第29页 |
4 本研究的目的与意义 | 第29-30页 |
试验Ⅰ 抗鸡新城疫病毒 F48E9株单克隆抗体的制备 | 第30-52页 |
材料与方法 | 第30-41页 |
1 材料 | 第30-34页 |
·实验动物与鸡胚 | 第30页 |
·病毒与细胞 | 第30页 |
·1%鸡红细胞悬液的配制 | 第30页 |
·主要试剂 | 第30-33页 |
·病毒增殖与纯化常用溶液与试剂 | 第30-31页 |
·小鼠免疫常用试剂 | 第31页 |
·细胞培养与融合常用试剂的配制 | 第31-32页 |
·ELISA常用试剂的配制 | 第32-33页 |
·Folin酚法测蛋白浓度常用试剂 | 第33页 |
·纯化腹水常用试剂 | 第33页 |
·抗体标记常用试剂 | 第33页 |
·主要仪器 | 第33-34页 |
2 方法 | 第34-41页 |
·病毒的复制与纯化 | 第34页 |
·抗NDV单克隆抗体的制备 | 第34-38页 |
·单克隆抗体的纯化 | 第38页 |
·抗新城疫病毒单克隆抗体的生物学特性鉴定 | 第38-40页 |
·酶标记单克隆抗体的制备与纯化 | 第40-41页 |
结果与分析 | 第41-47页 |
1 病毒的增殖与纯化 | 第41页 |
2 阳性杂交瘤细胞株检测方法--间接ELISA的建立 | 第41-42页 |
3 NDV单克隆抗体杂交瘤细胞系的建立 | 第42-44页 |
4 NDV单克隆抗体的特性鉴定 | 第44-47页 |
讨论 | 第47-51页 |
1 免疫原的制备 | 第47页 |
2 阳性杂交瘤筛选方法的建立 | 第47-48页 |
3 饲养细胞的制备 | 第48页 |
4 细胞融合中组织培养板的选择 | 第48-49页 |
5 腹水的制备 | 第49页 |
6 腹水的纯化 | 第49-50页 |
7 单克隆抗体的生物学特性鉴定 | 第50页 |
8 不足之处 | 第50-51页 |
结论 | 第51-52页 |
试验Ⅱ 单抗夹心ELISA方法的建立与优化 | 第52-67页 |
材料与方法 | 第52-57页 |
1 材料 | 第52-53页 |
2 方法 | 第53-57页 |
·单抗夹心ELISA法的操作步骤 | 第53页 |
·单克隆抗体配对试验 | 第53页 |
·单抗夹心ELISA试验方法的优化 | 第53-55页 |
·包被单抗最佳包被浓度和酶标单抗最佳工作浓度的确定 | 第53页 |
·微量反应板的处理 | 第53页 |
·包被液的选择 | 第53-55页 |
·封闭液的选择 | 第55页 |
·酶标抗体稀释液的选择 | 第55页 |
·酶标抗体作用时间的选择 | 第55页 |
·底物最佳反应时间的选择 | 第55页 |
·单抗夹心ELISA试验方法的鉴定 | 第55-57页 |
·特异性抗体阻断试验 | 第55页 |
·敏感性检测 | 第55页 |
·重复性检测 | 第55-57页 |
结果与分析 | 第57-63页 |
1 单克隆抗体配对试验 | 第57页 |
2 单抗夹心ELISA试验方法的优化 | 第57-61页 |
·包被单抗和酶标单抗最佳稀释度的确定 | 第57-58页 |
·紫外线照射反应板对试验结果的影响 | 第58-59页 |
·包被液的选择 | 第59页 |
·封闭液的选择 | 第59-60页 |
·酶标抗体稀释液的选择 | 第60页 |
·酶标抗体作用时间的选择 | 第60-61页 |
·底物最佳反应时间的选择 | 第61页 |
3 单抗夹心ELISA试验方法的鉴定 | 第61-63页 |
·特异性 | 第61页 |
·敏感性 | 第61-62页 |
·重复性 | 第62-63页 |
讨论 | 第63-66页 |
1 包被单抗和酶标单抗最佳配对的选择 | 第63页 |
2 关于单抗夹心ELISA试验条件的优化 | 第63-64页 |
3 关于单抗夹心ELISA试验的质量控制 | 第64-65页 |
4 需要进一步开展的工作 | 第65-66页 |
结论 | 第66-67页 |
参考文献 | 第67-73页 |
附录 | 第73-75页 |
致谢 | 第75-77页 |
作者简介 | 第77页 |