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反义磷脂酶Dγ基因与几丁质酶基因转化杨树的研究

中文摘要第1-10页
英文摘要第10-13页
1 引言第13-21页
   ·磷脂与磷脂酶第13-17页
     ·磷脂酶 D(PLD)的发现与基因的克隆第15页
     ·PLD 的生理作用第15-16页
     ·PLD 基因在植物育种上的应用潜力第16-17页
   ·几丁质酶的作用第17-21页
     ·植物几丁质酶的特性第18-19页
     ·几丁质酶与植物的防卫反应机制第19页
     ·植物转几丁质酶基因工程的研究第19-21页
2 材料与方法第21-33页
   ·实验材料第21-24页
     ·植物材料第21页
     ·农杆菌菌株和质粒第21页
     ·试剂第21-23页
       ·质粒提取试剂第21-22页
       ·植物基因组 DNA 提取试剂第22页
       ·电泳缓冲液配制第22页
       ·GUS 检测缓冲液的配制第22-23页
       ·Southern 杂交试剂第23页
       ·Fe2(KCN)3显色液第23页
     ·酶及生化试剂第23页
       ·酶第23页
       ·生化试剂第23页
     ·仪器第23-24页
   ·研究方法第24-33页
     ·美洲黑杨 G2 组培再生系统的建立第24页
       ·抑菌性抗生素(头孢霉素)敏感性试验第24页
       ·选择性抗生素(卡那霉素?潮霉素)敏感性试验第24页
     ·根癌农杆菌介导的基因转化第24-26页
       ·培养基的配制第25页
       ·农杆菌的培养第25页
       ·改良农杆菌侵染法转化杨树第25页
       ·转化条件的优化第25-26页
       ·转化芽获得第26页
     ·杨树再生苗的 PCR 检测第26-30页
       ·质粒 DNA 碱法提取第26-27页
       ·美洲黑杨 G2 植物基因组 DNA 提取试剂第27-28页
       ·PCR 扩增第28-29页
       ·电泳检测 PCR 扩增结果第29-30页
     ·PCR-Southern 检测第30-31页
     ·转化植株的耐盐性生根鉴定第31页
     ·GUS 基因稳定表达的组织化学染色第31页
     ·转化植株移栽第31页
     ·移栽植株耐盐性测定第31-32页
       ·电导率测定第31-32页
       ·移栽植株耐盐性的测定第32页
     ·几丁质酶活性测定第32-33页
       ·粗酶液的制备第32页
       ·胶状几丁质(Collodial chitin)的制备第32页
       ·几丁质酶活性测定第32-33页
3 结果第33-48页
   ·美洲黑杨 G2 组培再生体系的确立第33-36页
     ·叶片外植体芽分化培养基的确立第33-34页
       ·再生芽的获得第33页
       ·不同激素浓度对芽分化的影响第33-34页
     ·组培苗生根培养基的筛选第34页
     ·抗生素敏感性浓度的确定第34-36页
       ·头孢霉素敏感性试验第34-35页
       ·选择性抗生素(卡那霉素?潮霉素)敏感性试验第35-36页
   ·农杆菌介导基因的转化第36-39页
     ·外植体(转化受体材料)的准备第37页
     ·外植体的预培养第37页
     ·菌液浓度和侵染时间对转化效果的影响第37-38页
     ·共培养时间对转化效果的影响第38-39页
   ·转基因植株的抗性筛选第39页
   ·PCR,PCR-Southern 鉴定第39-42页
   ·转反义 PLDγ基因植株的耐盐性测定与筛选第42页
   ·GUS 基因稳定表达的组织化学染色第42-44页
   ·转化植株移栽第44-45页
   ·转化植株耐盐性测定第45-47页
     ·电导率测定第45-46页
     ·转基因植株耐盐性的增强第46-47页
   ·几丁质酶活性测定第47-48页
4 讨论第48-51页
   ·多价基因的转化第48-49页
   ·转化过程中的选择时期第49-50页
   ·生物基因表达的反义调控第50-51页
5 结论第51-52页
6 参考文献第52-61页
7 致谢第61-62页
8 攻读学位期间发表论文情况第62页

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