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紫云英SSR引物的开发及种质资源遗传多样性分析

摘要第1-8页
Abstract第8-10页
第一章 绪论第10-30页
 1 紫云英的概述第10-11页
   ·紫云英研究现状第10-11页
 2.遗传多样性、遗传标记及应用第11-20页
   ·遗传多样性第11页
   ·遗传学研究的意义第11-12页
   ·遗传标记及其研究方法第12-15页
   ·分子标记的特点第15页
   ·DNA 分子标记的建立和发展第15-16页
   ·DNA 分子标记技术类型第16-20页
 3.主要 DNA 标记的种类和应用第20-28页
   ·RFLP第20页
   ·随机扩增多态性 DNA (RAPD)第20-21页
   ·简单重复序列(SSR)第21-22页
   ·简单重复序列区间 ISSR第22-23页
   ·序列相关扩增多态性 SRAP第23-24页
   ·分子标记的应用第24-28页
 4.论文研究的内容、意义及技术路线第28-30页
   ·论文研究的内容第28页
   ·本论文的立题意义第28-29页
   ·本论文的技术路线:第29-30页
第二章 紫云英 ISSR 引物的筛选及 ISSR-PCR 反应体系的优化及多样性分析第30-47页
 1 材料第30-31页
   ·供试材料第30页
   ·试验主要试剂第30页
   ·实验所用引物第30-31页
   ·试验仪器(型号)第31页
 2 试验方法第31-35页
   ·紫云英 DNA 的提取及检测第31-33页
   ·温度梯度 PCR第33页
   ·ISSR-PCR 的反应体系和条件第33-34页
   ·正交实验设计优化 PCR 反应体系第34-35页
   ·种质资源的亲缘关系聚类分析第35页
 3 结果与分析第35-45页
   ·基因组提取与检测第35-36页
   ·ISSR-PCR 筛选引物与最佳退火温度第36-38页
   ·正交结果直观分析第38-39页
   ·正交结果方差分析第39-40页
   ·单因素水平对 ISSR-PCR 的影响第40-43页
     ·Taq 酶浓度对 ISSR-PCR 结果的影响第40-41页
     ·引物对 ISSR-PCR 结果的影响第41页
     ·dNTP 浓度对 ISSR-PCR 的影响第41-42页
     ·Mg~(2+) 浓度对 ISSR-PCR 的影响第42页
     ·模板浓度对 ISSR-PCR 的影响第42-43页
   ·紫云英 ISSR-PCR 反应体系稳定性的验证第43-44页
   ·聚类分析第44-45页
 4. 讨论第45-46页
 5. 结论第46-47页
第三章 基于 ISSR-PCR 对紫云英 SSR 引物的开发及对种质资源的鉴别应用第47-66页
 1.材料第47-48页
   ·供试材料第47页
   ·试验主要试剂第47-48页
   ·实验所用的引物第48页
   ·试验仪器(型号)第48页
 2.试验方法第48-57页
   ·紫云英 DNA 的提取及检测第48-49页
   ·PCR 产物的回收第49-50页
   ·目的基因的连接和转化第50-52页
     ·大肠杆菌感受态细胞的制备第50-51页
     ·连接与转化第51页
     ·细菌培养基第51页
     ·聚丙烯酰胺凝胶电泳第51-52页
   ·基于 ISSR-PCR 开发紫云英 SSR 正向物第52-53页
   ·基因组酶切和与接头连接、转化及反向引物的开发第53-56页
     ·DNA 酶切第54-55页
     ·接头连接第55页
     ·PCR 检测第55-56页
     ·巢式 PCR 扩增、测序及 SSR 反向引物设计第56页
   ·SSR 引物的筛选及 PCR 扩增第56-57页
   ·紫云英种质资源的遗传关系聚类分析第57页
 3.结果与分析第57-65页
   ·基因组 DNA 提取结果第57-58页
   ·基因用 ECORV 酶切结果第58页
   ·ISSR-PCR 扩增及菌液检测结果第58-59页
   ·巢式 PCR 扩增、测序及反向 SSR 引物设计第59-61页
   ·用 ISSR-PCR 开发 SSR 引物的结果第61页
   ·SSR 引物扩增后的聚丙烯酰胺凝胶电泳结果第61-62页
   ·聚类分析第62-65页
 4. 讨论第65页
 5. 结论第65-66页
第四章 总结与展望第66-68页
 1. 总结第66-67页
 2. 展望第67-68页
参考文献第68-77页
附表:第77-78页
附图第78-84页
作者简介第84-85页
致谢第85-86页
附件第86页

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