| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-10页 |
| 第一章 综述 | 第10-44页 |
| 第一节 癌症及其治疗 | 第10-14页 |
| ·癌症的基本特征 | 第10-11页 |
| ·癌症发生的分子机制 | 第11-13页 |
| ·癌症的治疗现状 | 第13-14页 |
| 第二节 细胞凋亡研究概况 | 第14-30页 |
| ·细胞凋亡的特征 | 第15页 |
| ·细胞凋亡与坏死的区别 | 第15-16页 |
| ·细胞凋亡的调节基因 | 第16-21页 |
| ·细胞凋亡的信号传导途径 | 第21-25页 |
| ·活性氧(reactive oxygen species，ROS)与细胞凋亡 | 第25-27页 |
| ·DNA 损伤与细胞凋亡 | 第27-28页 |
| ·细胞凋亡的生物学意义 | 第28页 |
| ·细胞凋亡常用的检测方法 | 第28-30页 |
| 第三节 As_2O_3的研究进展 | 第30-35页 |
| ·As_2O_3 的应用 | 第30-31页 |
| ·As_2O_3 对肿瘤细胞的作用机制 | 第31-33页 |
| ·As_2O_3 与细胞内氧化还原调节 | 第33-35页 |
| 第四节 本研究的目的及意义 | 第35-37页 |
| 参考文献 | 第37-44页 |
| 第二章 三氧化二砷联合 Trolox 对人早幼粒白血病细胞 HL-60 增殖和凋亡的影响 | 第44-74页 |
| 1 实验材料 | 第44页 |
| 2 实验试剂 | 第44页 |
| 3 实验仪器与药品 | 第44页 |
| 4 实验方法 | 第44-50页 |
| ·细胞培养 | 第44-45页 |
| ·MTT 法测试受试化合物对HL-60 细胞的细胞毒作用 | 第45页 |
| ·台盼蓝排染法检测受试化合物对HL-60 细胞的增殖抑制及致死效应 | 第45-46页 |
| ·流式细胞术检测药物对细胞周期的影响 | 第46-47页 |
| ·荧光染料Hoechst33258 染色法检测药物诱导HL-60 细胞凋亡 | 第47页 |
| ·吉姆萨染色（Giemsa stain）观察药物引起的HL-60 细胞的形态变化 | 第47-48页 |
| ·单细胞凝胶电泳法（SCGE）检测药物对HL-60 细胞的DNA 损伤 | 第48-49页 |
| ·DCFH-DA 法检测药物作用对HL-60 细胞活性氧的影响 | 第49页 |
| ·流式细胞术检测药物对细胞凋亡的影响与H202 的关系 | 第49-50页 |
| ·单细胞凝胶电泳法（SCGE）检测药物对人外周血单个核细胞的损伤 | 第50页 |
| ·数据统计 | 第50页 |
| 5 实验结果 | 第50-64页 |
| ·As_2O_3 对HL-60 细胞生长的影响 | 第50-51页 |
| ·As_2O_3 单独和联用Trolox 对HL-60 细胞的增殖抑制及致死效应 | 第51-52页 |
| ·流式细胞术分析As_2O_3 单独及联合100μmol·L-1Trolox 对HL-60 细胞周期的影响 | 第52-53页 |
| ·荧光染色法分析As_2O_3 单独和联用Trolox 诱导HL-60 细胞凋亡 | 第53-57页 |
| ·As_2O_3 单独及联合Trolox 对HL-60 细胞形态的影响 | 第57-58页 |
| ·As_2O_3 单独及联合Trolox 作用对HL-60 细胞DNA 损伤的影响 | 第58-59页 |
| ·As_2O_3 单独及联合100μmol·L-1Trolox 对HL-60 细胞内ROS 的影响 | 第59-60页 |
| ·流式细胞术检测药物对细胞凋亡的影响与H202 的关系 | 第60-62页 |
| ·As_2O_3 单独及联合100μmol·L-1Trolox 对人外周血单个核细胞DNA 损伤的影响 | 第62-64页 |
| 6 分析与讨论 | 第64-68页 |
| 7 结论 | 第68-70页 |
| 参考文献 | 第70-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
| 附录 | 第75页 |
