高效的农杆菌介导紫花苜蓿遗传转化体系的建立
| 中文摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 第一章 引言 | 第9-11页 |
| 第二章 国内外研究进展 | 第11-46页 |
| ·植物遗传转化方法 | 第11-29页 |
| ·载体介导法 | 第11-21页 |
| ·直接转化法 | 第21-26页 |
| ·种质系统转化法 | 第26-29页 |
| ·植物遗传转化中的标记基因 | 第29-34页 |
| ·报告基因 | 第30-32页 |
| ·选择标记基因 | 第32-34页 |
| ·紫花苜蓿遗传转化 | 第34-46页 |
| ·抗性 | 第34-39页 |
| ·紫花苜蓿品质改良 | 第39-42页 |
| ·紫花苜蓿作为生物反应器 | 第42-44页 |
| ·紫花苜蓿的生物固氮 | 第44-46页 |
| 第三章 材料与方法 | 第46-53页 |
| ·实验材料 | 第46-47页 |
| ·植物材料 | 第46页 |
| ·植物培养基 | 第46页 |
| ·农杆菌菌株及其所带质粒 | 第46页 |
| ·农杆菌培养基 | 第46-47页 |
| ·主要试剂 | 第47页 |
| ·主要实验仪器和设备 | 第47页 |
| ·实验方法 | 第47-53页 |
| ·农杆菌介导的转化流程 | 第47-48页 |
| ·外植体的选择 | 第48-49页 |
| ·Bialaphos选择压的确定 | 第49页 |
| ·预培养时间的确定 | 第49页 |
| ·菌液浓度对转化效率的影响 | 第49页 |
| ·侵染时间对转化效率的影响 | 第49页 |
| ·共培养时间的确定 | 第49-50页 |
| ·PCR检测鉴定转化植株 | 第50-51页 |
| ·PCR阳性植株的Basta抗性检测 | 第51-53页 |
| 第四章 结果与分析 | 第53-61页 |
| ·外植体的选择 | 第53页 |
| ·Bialaphos筛选浓度的确定 | 第53-54页 |
| ·预培养时间对转化的影响 | 第54-55页 |
| ·菌液浓度对转化效率的影响 | 第55-56页 |
| ·最佳侵染时间的确定 | 第56-57页 |
| ·共培养时间的确定 | 第57-58页 |
| ·农杆菌介导的转化流程图 | 第58-59页 |
| ·T_0代转化植株的PCR检测 | 第59-60页 |
| ·T_0代转化植株Basta抗性检测 | 第60-61页 |
| 第五章 讨论 | 第61-65页 |
| 第六章 结论 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 附录1 缩略词表 | 第78-79页 |
| 附录2 在读期间发表的论文 | 第79-80页 |
| 附录3 在读期间参加的科研项目 | 第80页 |
