| 致谢 | 第4-5页 |
| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 缩写和符号清单 | 第12-13页 |
| 文献综述 | 第13-20页 |
| 1 支持细胞 | 第13-14页 |
| 2 氧化应激 | 第14-15页 |
| 2.1 氧化应激产生的原因及作用 | 第14-15页 |
| 2.2 氧化应激的指示剂 | 第15页 |
| 3 Nrf2信号通路 | 第15-17页 |
| 4 ABCG2转运蛋白 | 第17-18页 |
| 4.1 ABCG2的结构 | 第17页 |
| 4.2 应激状态下ABCG2蛋白对细胞增殖的影响 | 第17-18页 |
| 5 ABCG2在Nrf2信号通路中对细胞稳定增殖的调控 | 第18-19页 |
| 6 结语 | 第19-20页 |
| 引言 | 第20-21页 |
| 1 材料与方法 | 第21-30页 |
| 1.1 试验材料、试剂与仪器 | 第21-23页 |
| 1.1.1 试验细胞来源 | 第21页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第21页 |
| 1.1.3 主要试验设备 | 第21-22页 |
| 1.1.4 常用试剂及配置 | 第22-23页 |
| 1.2 试验方法 | 第23-29页 |
| 1.2.1 GSC氧化应激模型的建立 | 第23-24页 |
| 1.2.2 氧化应激下ABCG2基因在GSC内的表达和定位 | 第24-28页 |
| 1.2.3 氧化应激时ABCG2在Nrf2信号通路中对GSC稳定增值的调控机制 | 第28-29页 |
| 1.3 数据分析 | 第29-30页 |
| 2 结果与分析 | 第30-41页 |
| 2.1 GSC氧化应激模型的建立 | 第30-33页 |
| 2.1.1 培养液中添加不同浓度的H_2O_2对GSC细胞存活率的影响 | 第30页 |
| 2.1.2 培养液中添加不同浓度的H_2O_2对GSC的MDA含量和SOD活性的影响 | 第30-31页 |
| 2.1.3 培养液中添加不同浓度的H_2O_2对GSC核型稳定性的影响 | 第31-32页 |
| 2.1.4 培养液中添加不同浓度的H_2O_2对GSCDNA倍体的影响 | 第32-33页 |
| 2.2 氧化应激下ABCG2基因在GSC内的表达和定位 | 第33-36页 |
| 2.2.1 RNA质量检测结果 | 第33-34页 |
| 2.2.2 cDNA完整性鉴定 | 第34页 |
| 2.2.3 ABCG2基因的RT-PCR扩增结果 | 第34-35页 |
| 2.2.4 实时荧光定量PCR结果和分析 | 第35-36页 |
| 2.2.5 氧化应激下ABCG2基因在GSC上的表达和定位 | 第36页 |
| 2.3 氧化应激时ABCG2基因在Nrf2信号通路中对GSC稳定增值的调控机制 | 第36-41页 |
| 2.3.1 RNA质量检测结果 | 第36-37页 |
| 2.3.2 cDNA完整性鉴定 | 第37页 |
| 2.3.3 Nrf2、HO-1、NQO1基因的RT-PCR扩增结果 | 第37-38页 |
| 2.3.4 实时荧光定量PCR结果和分析 | 第38-41页 |
| 3 讨论 | 第41-45页 |
| 3.1 GSC氧化应激模型的建立 | 第41-42页 |
| 3.2 氧化应激下ABCG2基因在GSC内的表达和定位 | 第42-43页 |
| 3.3 氧化应激时ABCG2基因在Nrf2信号通路中对GSC稳定增值的调控机制 | 第43-45页 |
| 4 结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-54页 |
| 附录 | 第54页 |
