| 中文摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第一部分 牙龈卟啉单胞菌促凝血功能域Hgp44的表达纯化与生物学功能初步研究 | 第10-28页 |
| 绪论 | 第10-11页 |
| 1.1 材料及来源 | 第11-13页 |
| 1.1.1 质粒和菌株 | 第11-12页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第12页 |
| 1.1.3 相关溶液配制 | 第12-13页 |
| 1.2 实验方法 | 第13-19页 |
| 1.2.1 牙龈卟啉单胞菌的培养 | 第13页 |
| 1.2.2 牙龈卟啉单胞菌基因组DNA的提取 | 第13-14页 |
| 1.2.3 Hgp44蛋白截短以及引物设计 | 第14页 |
| 1.2.4 Hgp44基因PCR克隆 | 第14-15页 |
| 1.2.5 双酶切反应 | 第15-16页 |
| 1.2.6 连接 | 第16页 |
| 1.2.7 感受态制备 | 第16页 |
| 1.2.8 转化 | 第16-17页 |
| 1.2.9 菌落鉴定 | 第17页 |
| 1.2.10 质粒提取 | 第17-18页 |
| 1.2.11 诱导表达 | 第18页 |
| 1.2.12 tHgp44-ELPs融合蛋白纯化 | 第18页 |
| 1.2.13 红细胞分离纯化 | 第18页 |
| 1.2.14 红细胞凝集试验 | 第18-19页 |
| 1.3 实验结果 | 第19-26页 |
| 1.3.1 Hgp44基因克隆 | 第19-20页 |
| 1.3.2 构建tHGP44-ELP表达质粒 | 第20页 |
| 1.3.3 表达质粒的测序结果 | 第20-21页 |
| 1.3.4 tHGP44-ELP的表达纯化结果 | 第21-22页 |
| 1.3.5 tHgp44-ELPs红细胞凝集定性试验 | 第22-24页 |
| 1.3.6 tHgp44-ELPs红细胞凝集定量试验 | 第24-25页 |
| 1.3.7 tHgp44-ELPs红细胞凝集显微镜观察 | 第25-26页 |
| 1.4 讨论 | 第26页 |
| 1.5 小结 | 第26-27页 |
| 参考文献 | 第27-28页 |
| 第二部分 减毒沙门氏菌VNP20009的脂肪组织靶向性以及生物安全性探讨 | 第28-39页 |
| 绪论 | 第28页 |
| 2.1 材料及来源 | 第28-29页 |
| 2.2 实验方法 | 第29-31页 |
| 2.2.1 营养性肥胖小鼠模型的构建 | 第29页 |
| 2.2.2 荷B16F10黑色素瘤肥胖小鼠模型的构建 | 第29页 |
| 2.2.3 VNP20009在小鼠组织中的生物学分布分析 | 第29-30页 |
| 2.2.4 比色法定量制备VNP20009悬浊液 | 第30页 |
| 2.2.5 口服(灌胃)给菌法 | 第30页 |
| 2.2.6 腹腔注射给菌法 | 第30-31页 |
| 2.2.7 鼻腔(滴鼻)给菌法 | 第31页 |
| 2.2.8 脂肪组织匀浆与梯度稀释 | 第31页 |
| 2.2.9 比色法测定低脂肪浓度下细菌生长曲线 | 第31页 |
| 2.3 实验结果 | 第31-36页 |
| 2.3.1 VNP20009在正常小鼠和肥胖小鼠中的生物学分布的比较 | 第31-33页 |
| 2.3.2 VNP20009在营养性肥胖小鼠和遗传性肥胖小鼠中的生物学分布的比较 | 第33-34页 |
| 2.3.3 VNP20009在荷B16F10黑色素瘤肥胖小鼠中的生物学分布 | 第34页 |
| 2.3.4 口服、腹腔注射、滴鼻三种给药(菌)方式对于VNP20009在肥胖小鼠中生物学分布的比较 | 第34-35页 |
| 2.3.5 脂肪匀浆对VNP20009生长速度的影响 | 第35-36页 |
| 2.4 讨论 | 第36-37页 |
| 2.5 小结 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-39页 |
| 综述: 牙龈卟啉单胞菌促红细胞凝集研究进展 | 第39-46页 |
| 参考文献 | 第43-46页 |
| 硕士期间参与的工作 | 第46-47页 |
| 致谢 | 第47-49页 |
