| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-22页 |
| 1 PFOS和PFOA | 第10-17页 |
| 1.1 PFCs的简介 | 第10-11页 |
| 1.2 PFOS和PFOA毒性 | 第11-15页 |
| 1.2.1 急性毒性 | 第11-12页 |
| 1.2.2 基因毒性 | 第12页 |
| 1.2.3 细胞毒性 | 第12-13页 |
| 1.2.4 组织器官毒性 | 第13-14页 |
| 1.2.5 神经毒性 | 第14-15页 |
| 1.2.6 免疫毒性 | 第15页 |
| 1.3 PFOS和PFOA污染与暴露 | 第15-17页 |
| 1.3.1 环境介质 | 第15-17页 |
| 1.3.2 生物体系 | 第17页 |
| 2 涡虫 | 第17-20页 |
| 2.1 涡虫概述 | 第17-18页 |
| 2.2 涡虫在毒理学中的应用 | 第18-20页 |
| 3 本文研究的主要内容 | 第20-22页 |
| 第二章 q-PCR检测PFOS和PFOA处理后涡虫神经相关基因表达量的变化 | 第22-40页 |
| 1 前言 | 第22-23页 |
| 2 材料和方法 | 第23-26页 |
| 2.1 实验材和仪器 | 第23页 |
| 2.2 涡虫的胁迫 | 第23页 |
| 2.3 涡虫RNA的提取 | 第23-24页 |
| 2.4 RNA的完整性的检测 | 第24页 |
| 2.5 cDNA的反转录合成 | 第24-25页 |
| 2.6 PCR检测引物的特异性 | 第25页 |
| 2.7 q-PCR检测检测神经相关基因的相对表达量的变化 | 第25-26页 |
| 2.8 数据处理 | 第26页 |
| 3 结果 | 第26-37页 |
| 3.1 RNA电泳的图片 | 第26页 |
| 3.2 PFOA和PFOS处理涡虫各基因mRNA相对表达量的变化 | 第26-37页 |
| 3.2.1 FoxD基因mRNA相对表达量的变化 | 第27-29页 |
| 3.2.2 FoxG基因mRNA相对表达量的变化 | 第29-31页 |
| 3.2.3 nlg基因mRNA相对表达量的变化 | 第31-33页 |
| 3.2.4 otxA基因mRNA相对表达量的变化 | 第33-35页 |
| 3.2.5 otxB基因mRNA相对表达量的变化 | 第35-37页 |
| 4 讨论 | 第37-40页 |
| 第三章 PFOS和PFOA对再生涡虫酶活性影响 | 第40-50页 |
| 1 前言 | 第40页 |
| 2 材料和方法 | 第40-41页 |
| 2.1 实验材料和仪器 | 第40页 |
| 2.2 再生涡虫的胁迫 | 第40-41页 |
| 2.3 涡虫总蛋白的提取 | 第41页 |
| 2.4 酶活性的测定 | 第41页 |
| 2.5 数据处理 | 第41页 |
| 3 实验结果 | 第41-48页 |
| 3.1 PFOA对再生涡虫酶活性的影响 | 第41-45页 |
| 3.2 PFOS对再生涡虫酶活性的影响 | 第45-48页 |
| 4 讨论 | 第48-50页 |
| 第四章 PFOS和PFOA对再生涡虫神经系统的影响 | 第50-55页 |
| 1 前言 | 第50页 |
| 2 材料和方法 | 第50-51页 |
| 2.1 实验材料 | 第50页 |
| 2.2 再生涡虫的胁迫 | 第50页 |
| 2.3 实验方法 | 第50-51页 |
| 3 实验结果 | 第51-54页 |
| 3.1 PFOA对涡虫神经系统的影响 | 第51-52页 |
| 3.2 PFOS对涡虫神经系统的影响 | 第52-54页 |
| 4 讨论 | 第54-55页 |
| 总结与展望 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 发表论文及科研情况 | 第64页 |
