| 摘要 | 第4-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 前言 | 第12-16页 |
| 1 材料和方法 | 第16-28页 |
| 1.1 材料 | 第16-19页 |
| 1.1.1 实验用动物 | 第16页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第16-18页 |
| 1.1.3 引物设计 | 第18页 |
| 1.1.4 常用试剂的配制 | 第18-19页 |
| 1.2 方法 | 第19-28页 |
| 1.2.1 小鼠的繁殖 | 第19页 |
| 1.2.2 小鼠基因型鉴定 | 第19-22页 |
| 1.2.3 蛋白质免疫印迹实验(Western blotting) | 第22-24页 |
| 1.2.4 从细胞中提取总RNA | 第24-25页 |
| 1.2.5 将RNA反转录为cDNA | 第25页 |
| 1.2.6 Real-time Q-PCR | 第25-26页 |
| 1.2.7 流式细胞术实验 | 第26页 |
| 1.2.8 酶联免疫吸附实验 | 第26-28页 |
| 2 实验结果 | 第28-36页 |
| 2.1 Notch1在LPS刺激的CD19~(hi)B细胞上高表达 | 第28-29页 |
| 2.2 用CD19cre体系会使LPS刺激活化的B细胞上Notch1表达下降 | 第29-31页 |
| 2.3 B细胞特异性敲除Notch1后,用LPS刺激B细胞活化,抗体的产生减少 | 第31-32页 |
| 2.4 B细胞上Notch1敲除后,全脾细胞用LPS刺激培养后抗体的产生不受影响 | 第32页 |
| 2.5 B细胞上Notch1敲除后不影响实验性变态反应性脑脊髓膜炎(EAE)小鼠抗体的产生 | 第32-34页 |
| 2.6 将Notch1蛋白与特异性敲除Notch1的B细胞共培养,用LPS刺激培养,可促进抗体的产生 | 第34-36页 |
| 3 讨论 | 第36-40页 |
| 结论 | 第40-42页 |
| 参考文献 | 第42-46页 |
| 综述 | 第46-54页 |
| 参考文献 | 第51-54页 |
| 致谢 | 第54-56页 |
| 在读期间参加学术活动及研究成果 | 第56页 |
