| 摘要 | 第5-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第14-25页 |
| 1.1 类风湿性关节炎 | 第14-15页 |
| 1.1.1 类风湿性关节炎的概述 | 第14页 |
| 1.1.2 类风湿性关节炎的治疗 | 第14-15页 |
| 1.2 MDSCS在CIA小鼠中的作用 | 第15-19页 |
| 1.2.1 MDSCs的来源 | 第15页 |
| 1.2.2 MDSCs的亚群与生物学特征 | 第15-17页 |
| 1.2.3 MDSCs在自身免疫学疾病中的作用 | 第17页 |
| 1.2.4 MDSCs在CIA中的作用 | 第17-18页 |
| 1.2.5 Breg细胞与CIA之间的关系 | 第18页 |
| 1.2.6 MDSCs与B细胞之间的关系 | 第18-19页 |
| 1.3 exosomes在CIA小鼠中的作用 | 第19-22页 |
| 1.3.1 exosomes的形成 | 第19页 |
| 1.3.2 exosomes的特征和功能 | 第19-20页 |
| 1.3.3 exosomes的免疫调节作用 | 第20-21页 |
| 1.3.4 exosomes在免疫调节和自身免疫疾病之间的相关性 | 第21页 |
| 1.3.5 exosomes在类风湿性关节炎中作用的研究与应用 | 第21-22页 |
| 1.4 本实验的研究目的、方法、实验设计及意义 | 第22-25页 |
| 1.4.1 实验目的 | 第22页 |
| 1.4.2 实验方法 | 第22-23页 |
| 1.4.3 实验设计 | 第23-24页 |
| 1.4.4 本研究的意义 | 第24-25页 |
| 第二章 G-exosomes的制备及鉴定 | 第25-37页 |
| 2.1 实验仪器和材料 | 第25-30页 |
| 2.1.1 实验仪器 | 第25-26页 |
| 2.1.2 实验试剂和材料 | 第26-27页 |
| 2.1.3 主要溶液配制 | 第27-30页 |
| 2.1.4 实验动物与细胞 | 第30页 |
| 2.2 实验方法 | 第30-34页 |
| 2.2.1 Lewis肺癌移植瘤模型的构建 | 第30页 |
| 2.2.2 磁珠分选小鼠脾脏G-MDSCs | 第30-31页 |
| 2.2.3 G-exosomes的制备和蛋白浓度测定 | 第31-32页 |
| 2.2.4 Westernblot检测G-exosomes的特异性分子 | 第32-34页 |
| 2.2.5 透射电子显微镜观察G-exosomes的形态 | 第34页 |
| 2.2.6 纳米颗粒追踪分析exosomes粒径大小 | 第34页 |
| 2.3 实验结果 | 第34-36页 |
| 2.3.1 G-MDSCs纯度鉴定 | 第34-35页 |
| 2.3.2 G-exosomes表面分子的检测 | 第35页 |
| 2.3.3 G-exosomes的形态与粒径分析 | 第35-36页 |
| 2.3.4 G-exosomes的蛋白浓度测定 | 第36页 |
| 2.4 讨论 | 第36-37页 |
| 第三章 G-exosomes对胶原诱导性关节炎小鼠的影响 | 第37-50页 |
| 3.1 实验仪器和材料 | 第37-39页 |
| 3.1.1 实验仪器 | 第37-38页 |
| 3.1.2 实验试剂和材料 | 第38-39页 |
| 3.1.3 主要溶液配置 | 第39页 |
| 3.1.4 实验动物 | 第39页 |
| 3.2 实验方法 | 第39-43页 |
| 3.2.1 CIA小鼠模型的构建 | 第39-40页 |
| 3.2.2 实验分组 | 第40页 |
| 3.2.3 模型观察指标及评价方法 | 第40页 |
| 3.2.4 小鼠足趾关节病理学切片 | 第40页 |
| 3.2.5 小鼠淋巴结及脾脏中Breg细胞的比例 | 第40-41页 |
| 3.2.6 小鼠淋巴结及脾脏中Treg细胞的比例 | 第41页 |
| 3.2.7 小鼠淋巴结及脾脏中Tfh细胞的比例 | 第41-42页 |
| 3.2.8 小鼠淋巴结及脾脏中浆细胞的比例 | 第42页 |
| 3.2.9 小鼠血清IgG水平的检测 | 第42页 |
| 3.2.10 统计学分析 | 第42-43页 |
| 3.3 实验结果 | 第43-48页 |
| 3.3.1 G-exosomes可以减缓小鼠CIA发病过程 | 第43-44页 |
| 3.3.2 G-exosomes可以减轻CIA小鼠发病程度 | 第44页 |
| 3.3.3 各组小鼠淋巴结及脾脏中Treg、Breg细胞比例的变化 | 第44-46页 |
| 3.3.4 各组小鼠淋巴结及脾脏中浆细胞比例的变化 | 第46-47页 |
| 3.3.5 各组小鼠淋巴结及脾脏中Tfh细胞比例的变化 | 第47-48页 |
| 3.4 讨论 | 第48-50页 |
| 第四章 G-exosomes对小鼠Breg细胞的调控作用及机制 | 第50-62页 |
| 4.1 实验仪器和材料 | 第51-53页 |
| 4.1.1 实验仪器 | 第51-52页 |
| 4.1.2 实验试剂和材料 | 第52页 |
| 4.1.3 实验溶液配制 | 第52页 |
| 4.1.4 实验动物 | 第52-53页 |
| 4.2 实验方法 | 第53-57页 |
| 4.2.1 磁珠分选B细胞 | 第53页 |
| 4.2.2 G-exosomes与B细胞共培养 | 第53-54页 |
| 4.2.3 流式细胞术检测Breg细胞的比例 | 第54页 |
| 4.2.4 IL-10mRNA的检测 | 第54-55页 |
| 4.2.5 Westernblot检测B细胞中GSK-3β、p-GSK-3β、p-CREB的表达情况 | 第55-56页 |
| 4.2.6 B细胞摄取exosomes实验 | 第56-57页 |
| 4.2.7 统计学分析 | 第57页 |
| 4.3 实验结果 | 第57-60页 |
| 4.3.1 G-exosomes可以被B细胞摄取 | 第57-58页 |
| 4.3.2 G-exosomes促进Breg细胞比例增加 | 第58-59页 |
| 4.3.3 G-exosomes促进LPS刺激的B细胞中p-GSK-3β、p-CREB水平上调 | 第59-60页 |
| 4.4 讨论 | 第60-62页 |
| 第五章 结论、创新点及展望 | 第62-64页 |
| 5.1 结论 | 第62页 |
| 5.2 创新点 | 第62页 |
| 5.3 展望 | 第62-64页 |
| 参考文献 | 第64-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
| 攻读硕士期间发表的文章 | 第71页 |
