| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 第一章 绪论 | 第12-26页 |
| 1.1 引言 | 第12页 |
| 1.2 MOFs/聚合物复合材料 | 第12-18页 |
| 1.2.1 MOFs/聚合物复合材料简介 | 第12-13页 |
| 1.2.2 MOFs/聚合物复合材料的种类 | 第13-15页 |
| 1.2.3 MOFs/聚合物复合材料的应用 | 第15-18页 |
| 1.3 介孔二氧化硅/聚合物复合材料 | 第18-24页 |
| 1.3.1 介孔二氧化硅/聚合物复合材料简介 | 第18页 |
| 1.3.2 介孔二氧化硅/聚合物复合材料的种类 | 第18-21页 |
| 1.3.3 介孔二氧化硅/聚合物复合材料的应用 | 第21-24页 |
| 1.4 本课题选题意义、研究内容及创新点 | 第24-26页 |
| 1.4.1 选题意义 | 第24页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第24-25页 |
| 1.4.3 创新点 | 第25-26页 |
| 第二章 UiO-66-NH_2@PMAA复合材料的制备及固定化酶的研究 | 第26-58页 |
| 2.1 引言 | 第26-28页 |
| 2.2 实验试剂和仪器 | 第28-29页 |
| 2.2.1 实验试剂 | 第28-29页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第29页 |
| 2.3 实验步骤 | 第29-38页 |
| 2.3.1 UiO-66-NH_2的合成 | 第29-30页 |
| 2.3.2 UiO-66-alkynyl的合成 | 第30页 |
| 2.3.3 引发剂2-叠氮基-2-溴代异丁酸(ABIB)的合成 | 第30-31页 |
| 2.3.4 端基为叠氮的聚甲基丙烯酸叔丁酯(N_3-PtBMA)的合成 | 第31-32页 |
| 2.3.5 UiO-66-NH_2@PtBMA的合成 | 第32页 |
| 2.3.6 UiO-66-NH_2@PMAA的合成 | 第32-33页 |
| 2.3.7 DNS溶液的配制 | 第33页 |
| 2.3.8 果胶溶液的配制(10 mg/mL) | 第33页 |
| 2.3.9 果胶酶溶液的配制(10 U/mL) | 第33页 |
| 2.3.10 D-半乳糖醛酸标准曲线的绘制 | 第33-34页 |
| 2.3.11 固定化酶样品的制备 | 第34页 |
| 2.3.12 酶活性的测定方法 | 第34-35页 |
| 2.3.13 固定化酶量的测定方法 | 第35页 |
| 2.3.14 酶的最佳固定化参数 | 第35-36页 |
| 2.3.15 自由酶和固定化酶的稳定性探究 | 第36-37页 |
| 2.3.16 酶的解吸附 | 第37页 |
| 2.3.17 米氏常数(K_m) | 第37-38页 |
| 2.4 载体材料的表征 | 第38-39页 |
| 2.4.1 核磁共振氢谱(~1H NMR)分析 | 第38页 |
| 2.4.2 傅里叶红外光谱(FTIR)分析 | 第38页 |
| 2.4.3 粉末X射线衍射(PXRD)分析 | 第38页 |
| 2.4.4 冷场发射扫描电镜(SEM)分析 | 第38页 |
| 2.4.5 透射电子显微镜(TEM)分析 | 第38-39页 |
| 2.4.6 N_2吸附脱附(BET)分析 | 第39页 |
| 2.4.7 紫外-可见光吸收光谱(UV-vis)分析 | 第39页 |
| 2.5 结果与讨论 | 第39-57页 |
| 2.5.1 PXRD分析 | 第39-41页 |
| 2.5.2 FTIR分析 | 第41-43页 |
| 2.5.3 1H NMR分析 | 第43页 |
| 2.5.4 水溶液稳定性分析 | 第43-44页 |
| 2.5.5 TEM和SEM图谱分析 | 第44页 |
| 2.5.6 BET分析 | 第44-47页 |
| 2.5.7 固定化酶的最佳参数 | 第47-50页 |
| 2.5.8 自由酶、固定化酶的pH稳定性 | 第50-51页 |
| 2.5.9 自由酶、固定化酶的温度稳定性 | 第51-53页 |
| 2.5.10 固定化酶的储藏稳定性 | 第53页 |
| 2.5.11 固定化酶的重复使用性 | 第53-55页 |
| 2.5.12 酶的解吸附 | 第55页 |
| 2.5.13 米氏常数 | 第55-57页 |
| 2.6 本章总结 | 第57-58页 |
| 第三章 中空介孔二氧化硅/双重刺激响应聚合物复合材料的制备及药物控释性能研究 | 第58-92页 |
| 3.1 引言 | 第58-60页 |
| 3.2 实验试剂和仪器 | 第60-62页 |
| 3.2.1 实验试剂 | 第60-61页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第61-62页 |
| 3.3 实验步骤 | 第62-72页 |
| 3.3.1 HMS的制备 | 第62页 |
| 3.3.2 HMS-NH_2的合成 | 第62页 |
| 3.3.3 HMS-alkyne的合成 | 第62-63页 |
| 3.3.4 单-6-叠氮-β-环糊精(β-CD-N_3)的制备 | 第63-64页 |
| 3.3.5 HMS@β-CD的制备 | 第64页 |
| 3.3.6 含偶氮苯基团的光响应单体(PPMA)的合成 | 第64-66页 |
| 3.3.7 pH响应性单体(PtBMAMA)的合成 | 第66-67页 |
| 3.3.8 pH和光双重响应聚合物(PPP)的合成 | 第67-69页 |
| 3.3.9 标准工作曲线的确定 | 第69页 |
| 3.3.10 药物负载实验 | 第69-70页 |
| 3.3.11 药物释放实验 | 第70-71页 |
| 3.3.12 细胞毒性测试 | 第71-72页 |
| 3.4 材料的表征 | 第72-73页 |
| 3.4.1 核磁共振氢谱(~1H NMR)分析 | 第72页 |
| 3.4.2 傅里叶红外光谱(FTIR)分析 | 第72页 |
| 3.4.3 凝胶渗透色谱(GPC)分析 | 第72-73页 |
| 3.4.4 动态光散射(DLS)分析 | 第73页 |
| 3.4.5 紫外-可见光吸收光谱(UV-vis)分析 | 第73页 |
| 3.4.6 透射电子显微镜(TEM)分析 | 第73页 |
| 3.5 结果与讨论 | 第73-90页 |
| 3.5.1 ~1H NMR分析 | 第73-79页 |
| 3.5.2 FTIR分析 | 第79-80页 |
| 3.5.3 GPC数据分析 | 第80-81页 |
| 3.5.4 TEM分析 | 第81页 |
| 3.5.5 DLS分析 | 第81-83页 |
| 3.5.6 标准工作曲线的绘制 | 第83-84页 |
| 3.5.7 PTX和CDDP的负载 | 第84-85页 |
| 3.5.8 CDDP和PTX的释放 | 第85-87页 |
| 3.5.9 细胞毒性实验 | 第87-90页 |
| 3.6 本章总结 | 第90-92页 |
| 第四章 总结 | 第92-94页 |
| 参考文献 | 第94-104页 |
| 致谢 | 第104-106页 |
| 攻读硕士学位期间研究成果 | 第106页 |
