| 摘要 | 第6-7页 |
| abstract | 第7页 |
| 英文缩略表 | 第11-12页 |
| 第一章 引言 | 第12-22页 |
| 1.1 农药残留的研究背景 | 第12页 |
| 1.1.1 农药和农药残留的定义 | 第12页 |
| 1.1.2 农药残留的危害 | 第12页 |
| 1.2 动物源食品中农药残留分析的前处理技术 | 第12-14页 |
| 1.2.1 固相萃取技术(SPE) | 第13页 |
| 1.2.2 基质固相分散萃取(MSPDE) | 第13页 |
| 1.2.3 加速溶剂萃取技术(ASE) | 第13页 |
| 1.2.4 分子印迹聚合物技术 | 第13-14页 |
| 1.2.5 QuEChERS方法 | 第14页 |
| 1.2.6 凝胶渗透色谱(GPC) | 第14页 |
| 1.3 .农药残留分析的检测技术 | 第14-17页 |
| 1.3.1 免疫分析法 | 第14-15页 |
| 1.3.2 气相色谱-质谱联用法(GC–MS) | 第15页 |
| 1.3.3 液相色谱-质谱联用法(LC-MS) | 第15-16页 |
| 1.3.4 超临界流体色谱法(SFC) | 第16页 |
| 1.3.5 毛细管电泳色谱法(CE) | 第16页 |
| 1.3.6 QuEChERS技术 | 第16-17页 |
| 1.4 氟虫腈在动物源食品中的残留检测研究进展 | 第17-19页 |
| 1.4.1 氟虫腈的理化性质 | 第17-18页 |
| 1.4.2 氟虫腈结构图 | 第18页 |
| 1.4.3 氟虫腈毒作用机制 | 第18页 |
| 1.4.4 氟虫腈在动物源食品中的残留检测方法 | 第18-19页 |
| 1.5 氟硅唑在动物源食品中的残留检测研究进展 | 第19-20页 |
| 1.5.1 氟硅唑理化性质 | 第19-20页 |
| 1.5.1.1 氟硅唑毒作用机制 | 第19页 |
| 1.5.1.2 氟硅唑结构图 | 第19-20页 |
| 1.5.1.3 氟硅唑在动物源食品中的残留检测方法 | 第20页 |
| 1.6 研究目的、意义及主要内容 | 第20-22页 |
| 1.6.1 研究的目的和意义 | 第20-21页 |
| 1.6.2 主要内容包括 | 第21-22页 |
| 第二章 动物源食品中氟虫腈及它的三个主要代谢物残留分析方法的研究 | 第22-31页 |
| 2.1 材料方法 | 第22-23页 |
| 2.1.1 试剂与仪器 | 第22页 |
| 2.1.2 液相色谱质谱条件 | 第22-23页 |
| 2.1.3 标样配制 | 第23页 |
| 2.1.3.1 样品的前处理 | 第23页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第23-28页 |
| 2.2.1 UPLC-MS/MS条件 | 第23-24页 |
| 2.2.2 提取溶剂的选择 | 第24页 |
| 2.2.3 净化剂的选择 | 第24-25页 |
| 2.2.4 分析方法的线性选择 | 第25-26页 |
| 2.2.5 分析方法的回收率 | 第26-28页 |
| 2.3 方法验证 | 第28-29页 |
| 2.3.1 基质效应 | 第28页 |
| 2.3.2 线性及灵敏度 | 第28-29页 |
| 2.4 方法的应用 | 第29-31页 |
| 第三章 动物源食品中氟硅唑残留分析方法的研究 | 第31-37页 |
| 3.1 材料方法 | 第31-32页 |
| 3.1.1 试剂与仪器 | 第31页 |
| 3.1.2 液相色谱质谱条件 | 第31-32页 |
| 3.1.3 标样配制 | 第32页 |
| 3.1.3.1 样品的前处理 | 第32页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第32-35页 |
| 3.2.1 UPLC-MS/MS条件 | 第32页 |
| 3.2.2 提取溶剂的选择 | 第32-33页 |
| 3.2.3 净化剂的选择 | 第33页 |
| 3.2.4 分析方法的线性选择 | 第33-34页 |
| 3.2.5 分析方法的回收率 | 第34-35页 |
| 3.3 方法验证 | 第35页 |
| 3.3.1 基质效应 | 第35页 |
| 3.3.2 线性及灵敏度 | 第35页 |
| 3.4 方法的应用 | 第35-37页 |
| 第四章 全文结论 | 第37-38页 |
| 4.1 结论 | 第37页 |
| 4.2 创新点 | 第37页 |
| 4.3 展望 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-44页 |
| 致谢 | 第44-45页 |
| 作者简历 | 第45页 |